1 Tillverkare
Bruksanvisning för
SURVEYOR® Scan NRAS Kit
Exons 2, 3 & 4 CE IVD
för DHPLC-system
Läs dessa anvisningar noga innan du använder produkten.
Spara denna bruksanvisning för framtida bruk.
Denna sida har avsiktligt lämnats tom
Innehållsförteckning
1 Tillverkare ....................................................................................................................................... 4
2 SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD ................................................................... 4
2.1 Avsedd användning ..................................................................................................................................... 4
2.2 Indikationer ................................................................................................................................................. 4
3 Principer för SURVEYOR Scan NRAS mutationsdetektionsanalys.......................................... 4
3.1 KRAS och NRAS ............................................................................................................................................ 4
3.2 Analys av patientprover med SURVEYOR Scan-kit ...................................................................................... 5
3.3 SURVEYOR Nuclease ................................................................................................................................... 6
4 Härledning av kittets kontrollsubstanser .................................................................................... 6
5 Komponenter.................................................................................................................................. 7
5.1 Antal prover som kan testas med ett kit ..................................................................................................... 8
5.2 DNA-sekvensering ....................................................................................................................................... 8
6 Ytterligare nödvändig utrustning och reagenser ....................................................................... 9
7 Reagensberedning ........................................................................................................................ 9
8 Förvaring och hållbarhet............................................................................................................... 9
9 Varningar och försiktighetsåtgärder ........................................................................................... 9
10 Förberedande provinsamling, hantering och förvaring ........................................................ 10
11 Analysprocess ........................................................................................................................... 10
11.1 Somatisk mutationsdetektion med SURVEYOR Scan-kit - En översikt .................................................... 10
12 Stegvisa anvisningar ................................................................................................................. 11
12.1 Installation/kalibrering av DHPLC ........................................................................................................... 11
12.2 Att tänka på före NRAS-provanalys ......................................................................................................... 11
12.3 Att tänka på avseende templat ............................................................................................................... 11
12.4 Att tänka på avseende arbetsflöde ......................................................................................................... 12
12.5 Amplifieringsprotokoll ............................................................................................................................ 14
12.6 Termocykelprogram för amplifieringsprotokoll ...................................................................................... 16
12.7 Kvalitetskontroll av PCR-produkter ......................................................................................................... 16
12.8 SURVEYOR Nuclease-nedbrytning........................................................................................................... 17
13 Kontrollrutiner ............................................................................................................................ 18
13.1 Kvalitetskontroll av SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD ..................................................... 18
13.2 Användning av kontrollplasmid-DNA ...................................................................................................... 18
14 Tolkning av resultat ................................................................................................................... 19
14.1 Analys av NRAS Exons 2, 3 & 4 med SURVEYOR Nuclease ...................................................................... 19
14.2 Granskning av SURVEYOR Scan-resultat ................................................................................................. 19
14.3 Exempel på resultat ................................................................................................................................ 20
15 Prestationsegenskaper ............................................................................................................. 23
15.1 LOD för mutationer med SURVEYOR Scan-kit ......................................................................................... 23
15.2 Sekvensbekräftelse ................................................................................................................................. 23
15.3 Analysprocessens begränsningar ............................................................................................................ 23
Bilaga A............................................................................................................................................ 25
A.1 Översikt av platta för SURVEYOR Scan kit................................................................................................. 25
A.2 Kontrollernas DNA-stämplar ..................................................................................................................... 25
A.3 Systemkrav för denaturering med HPLC (DHPLC) .................................................................................... 26
A.4 Laboratorieinstallation för PCR-analyser .................................................................................................. 27
A.5 Litteraturlista ............................................................................................................................................ 28
Bilaga B ............................................................................................................................................ 29
Felsökningsguide ............................................................................................................................................. 29
Beställningsinformation ................................................................................................................. 36
Kontaktuppgifter ............................................................................................................................. 36
översättning Ansvarsfriskrivning ................................................................................................. 37
Varumärken & upphovsrätt............................................................................................................ 37
1 Tillverkare
1 Tillverkare
M
Tillverkare
EGrepresentant
P
Transgenomic, Inc.
12325 Emmet Street, Omaha, NE 68164, USA
Tel +1-402-452-5400
Transgenomic Limited
40 Watt Road, Hillington Park, Glasgow G52 4RY, UK
Tel +44-141-892-8800
2 SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD
2.1 Avsedd användning
Endast för professionellt bruk. Transgenomics SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2,3 & 4 CE IVD
är en in vitro diagnostisk analys som detekterar somatiska mutationer i exoner 2, 3 och 4 hos
NRAS-genen. Dessa mutationer indiceras av SURVEYOR Nuclease-klyvningstoppar och
inkluderar de mutationer som har känd potential för klinisk signifikans. Detta kit är utformat för
användning i ett kliniskt diagnostiskt laboratorium av utbildad personal som testar DNA som
utvunnits ur formalinfixerad paraffininbäddad vävnad.
Detta kit, katalognummer 710400, tillhandahålls som en låda med de komponenter som anges
nedan. Denna bruksanvisning kan hämtas på
http://world.Transgenomic.com/files/literature/482296-SV.pdf.
2.2 Indikationer
Kliniker kan använda SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD med DHPLC-system för
att underlätta fastställande om patienters kolorektala cancer kanske inte kommer att svara på
behandling med EGFR-hämmare (epidermal growth factor receptor) såsom panitumumab.
SURVEYOR Scan NRAS kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD ska användas för analys av sådana prover
som fastställs vara KRAS Exon 2 Wild-Type efter analys med SURVEYOR Scan KRAS-kittet Exon
2 CE IVD. Detta kit ska även användas tillsammans med SURVEYOR Scan KRAS Kit Exons 2, 3
& 4 CE IVD.
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD får inte användas för diagnos av kolorektal
cancer eller någon annan form av cancer.
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD är en analys som detekterar förekomst av
potentiella somatiska mutationer i exoner 2, 3 och 4 hos NRAS-genen, men som inte bekräftar
mutationens sekvensidentitet. För att bestämma exakt vilken mutation som detekteras krävs
ytterligare analys, t.ex. DNA-sekvensering.
Analysresultaten med detta kit kommer visserligen att visa patientens mutationsstatus, men andra
kliniska faktorer bör beaktas, inklusive mutationer i NRAS exoner 2, 3 och 4. Resultat som erhålls
med SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD bör inte vara den enda metod som
används för att besluta om behandling av patienter med kolorektal cancer.
Det är viktigt att notera att användning av DHPLC för att identifiera prover som är positiva för en
NRAS-mutation med detta kit endast bör utgöra en vägledning och att alla mutationer måste
bekräftas genom ytterligare analys, t.ex. DNA-sekvensering.
3 Principer för SURVEYOR Scan NRAS
mutationsdetektionsanalys
3.1 KRAS och NRAS
Riktade terapier för receptorn EGFR (epidermal growth factor receptor) har visat sig vara effektiva
mot kolorektalcancer. Forskning har visat att cirka 40% av kolorektala tumörer bär på somatiska
KRAS-genmutationer och kliniska studier har visat att mutationer i KRAS exon 2 (kodon 12 och
13) förutspår uteblivet svar på EGFR-hämmare. Undersökande studier som nyligen genomförts
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 4
3 Principer för SURVEYOR Scan NRAS mutationsdetektionsanalys
har visat att patientpopulationen kan sållas ytterligare eftersom även patienter med mCRC-tumörer
med ytterligare en mutation i KRAS exoner 3 och 4 eller NRAS exoner 2, 3 och 4 inte tenderade
1-7
att svara på behandling som innehöll EGFR-hämmare . Detta kit är utformat för användning vid
diagnostisk analys av somatiska mutationer i NRAS exoner 2, 3 & 4.
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD är en analys för att detektera alla sekvensoch små tillfogade/saknade förändringar i exoner 2, 3 & 4 i NRAS-genen. Mutationer i NRAS
kodon 12, 13, 59, 61, 117 och 146 har förknippats med bristande effekt hos panitumumab.
Positive Control tillhandahålls i detta kit för mutationer i kodon 12, 61 och 146.
Detta kit använder Transgenomics patentskyddade SURVEYOR Nuclease-teknik och ger, då den
används med DHPLC, enkel och känslig detektion av möjliga mutationer. Den kan detektera en
blandning av 2-5% muterat DNA i en bakgrund av ej muterat DNA. Kontrollstudier har påvisat
extremt hög överensstämmelse i väldefinierade prover med kolorektalcancer. Användning av
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD kommer att minska användarens
sekvenseringbörda och även hjälpa till vid sekvenseringsbestämning då automatisk
sekvenseringsprogramvara inte klarar att klargöra förekomst av låg mutationsnivå.
På grund av att denna analys har en hög känslighet i förhållande till Sanger-sekvensering
rekommenderas att laboratoriets installation är optimerad för att undvika korskontamination av
prover eller kontroller. Ett exempel på ett idealiskt laboratoriearrangemang finns i Bilaga A.4
Laboratorieinstallation för PCR-analyser.
3.2 Analys av patientprover med SURVEYOR Scan-kit
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD bör endast användas i anknytning till ett av de
arbetsflöden som anges nedan.
Arbetsflöde A
Patientprov
Test KRAS exoner 2, 3 och 4
samt
NRAS exoner 2, 3 och 4
Arbetsflöde B
Patientprov
Test KRAS exon 2
Resultat
KRAS kodon 12
eller 13 mutation
Resultat
KRAS kodon 12
eller 13 Wild-Type
Rapportera resultat
Rapportera
resultat
Test KRAS exoner 3 och 4
och
NRAS exoner 2, 3 och 4
Rapportera resultat
Figur 1 Arbetsflöden för SURVEYOR Scan mutationsdetektionskit
för screening av KRAS och NRAS
Se Bilaga A.1 Översikt av platta för SURVEYOR Scan kit för förslag hur en platta med 96
brunnar kan ordnas för analys av alla KRAS och NRAS exoner 2-4.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 5
3 Principer för SURVEYOR Scan NRAS mutationsdetektionsanalys
3.3 SURVEYOR Nuclease
Transgenomics SURVEYOR Nuclease är en avvikelsespecifik (mismatch-specific) växtbaserad
DNA - endonukleas som kan söka efter kända och okända mutationer och polymorfismer i
heteroduplex DNA8. Enzymet klyver DNA med hög precision på ställen med avvikelser i basen och
andra förändringar. Denna DNA-endonukleas klipper av båda strängarna på en DNA-heteroduplex
på 3’-sidan av det avvikande stället. Tillfogade/saknade och bassubstituerande avvikelser
identifieras men klyvningens effektivitet varierar beroende på sekvensen på avvikelsen.
Figur 2. Verkningssätt för
SURVEYOR Nuclease.
Endonukleasen känner igen en
avvikelse och klyvs vid 3’-sidan av
det avvikande stället. Detta klyver
den dubbla DNA-strängen och
lämnar kvar ett 3’-överhäng av ett
enda baspar.
SURVEYOR Nuclease har använts i många olika sammanhang för att korrekt detektera en rad
mutationer och polymorfismer i gener. I synnerhet har SURVEYOR Nuclease använts för att
bekräfta förekomsten av kända mutationer i ett antal gener som associeras med njurcancer,
lungcancer, cancer i huvud och nacke, leukemi, livmoderscancer och för att förutsäga resultatet av
9,10,11
.
strålbehandling
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD har utformats för att klyva avvikelser i NRAS
exoner 2, 3 och 4 för vidare analys med DHPLC.
OBS! Om ett prov är 100% muterad DNA, kan inga heteroduplexer bildas och provet
kommer att visas som "Wild-Type". Tumörbiopsiprover kommer emellertid att innehålla WildType-celler på grund av tumörheterogenitet och/eller kontaminerande normal vävnad; notera att
5% Wild-Type kan detekteras av detta kit med spår som är identiska till 5% muterat DNA.
OBS! Enbart den DNA-polymeras som tillhandahålls med detta kit ska användas för denna
analys.
OBS! Följ specifika anvisningar i handboken till ditt DHPLC-system.
För att framgångsrikt använda detta kit rekommenderar vi att du läser igenom den här
handboken och noggrant följer alla instruktioner och riktlinjer. Nya användare bör utföra de
kontrollexperiment som beskrivs i avsnittet Användning av kontroll-DNA-plasmider.
Om du har ytterligare frågor eller behöver hjälp kan du kontakta (888) 233-9283 (endast
Nordamerika), +1 (402) 452-5400 eller +44 (0) 141 892 8800 (Europa) och begära "NRASsupport". Alternativt kan du mejla oss på:
[email protected]
4 Härledning av kittets kontrollsubstanser
De kontrollsubstanser som tillhandahålls i detta kit är plasmida kloner av NRAS exon 2-, 3- och 4sekvenser. Alla kloner har sekvenserats för att verifiera sekvensens överensstämmelse genom
jämförelse med NCBI referenssekvens: NG_007572.
Kontrollerna har en genetisk "stämpel". Se Bilaga A.2 Kontrollernas DNA-stämpel; dessa
variationer av NRAS Wild-Type-sekvenser, i en region som inte förväntas ha mutationer, kan
användas för felsökning vid provkontaminering av Positive Control. Se Bilaga B -
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 6
4 Härledning av kittets kontrollsubstanser
Felsökningsguide, Problem 8, för ett exempel på en SURVEYOR Scan-härledning av sådan
kontamination.
"NRAS Control Wild-Type" konstruerades genom syntes och kloning av NRAS exoner 2, 3 och 4
med användning av ovanstående NCBI referenssekvens.
"NRAS Positive Control Exon 2" konstruerades genom syntes av NRAS exon 2 med användning
av ovanstående referenssekvens med G12D-mutationen. DNA-sekvensering bekräftade att den
enda förändringen i sekvensen är vid kodon 12 med en G12D, GGT>GAT förändring. Denna klon
blandas därefter med NRAS Control Wild-Type-DNA för att skapa en heterozygot blandning.
"NRAS Positive Control Exon 3" konstruerades genom syntes av NRAS exon 3 med användning
av ovanstående referenssekvens men med Q61K-mutationen. DNA-sekvensering bekräftade att
den enda förändringen i sekvensen är vid kodon 61 med en Q61K, CAA>AAA förändring. Denna
klon blandas därefter med NRAS Control Wild-Type-DNA för att skapa en heterozygot blandning.
"NRAS Positive Control Exon 4" konstruerades genom syntes av NRAS exon 4 med användning
av ovanstående referenssekvens men med A146T-mutationen. DNA-sekvensering bekräftade att
den enda förändringen i sekvensen är vid kodon 146 med en A146T, GCC>ACC förändring.
Denna klon blandas därefter med NRAS Control Wild-Type-DNA för att skapa en heterozygot
blandning.
5 Komponenter
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD består av (1) en SURVEYOR-låda med
nedbrytningskomponenter med 10 reagensrör utan tomma hål och (2) en yttre rörhållare för
PCR-komponenter och kontroller med 13 reagensrör och 7 tomma hål.
Katalognummer
Komponent
Färg på
rörets lock
Volym för 100
reaktioner
Lila
Svart
Rosa
Brunt
Rött
Orange
Orange
2 x 105 µL
105 µL
105 µL
105 µL
250 µL
2 x 125 µL
2 x 125 µL
Rött
Genomskinligt
Genomskinligt
Blått
Blått
Blått
Blått
Blått
Blått
Gult
Grönt
Grönt
Grönt
100 µL
1 mL
500 µL
90 µL
90 µL
90 µL
90 µL
90 µL
90 µL
120 µL
40 µL
40 µL
40 µL
SURVEYOR låda med nedbrytningskomponenter
710160
710161
708049
708027
708030
710153F
710153R
SURVEYOR Nuclease W
SURVEYOR Enhancer W2
SURVEYOR Enhancer Cofactor
0.15 M MgCl2 Solution
SURVEYOR Stop Solution
Universal Sequencing Primer 1 (10 µM)
Universal Sequencing Primer 2 (10 µM)
Låda med PCR-komponenter och kontroller
703310
703315
703065
710452F
710452R
710453F
710453R
710454F
710454R
710441
710442
710443
710444
482296
DNA Polymerase
DNA Polymerase 10X PCR Buffer
dNTPs (10 mM)
NRAS Primer Exon 2 Forward (10 µM)
NRAS Primer Exon 2 Reverse (10 µM)
NRAS Primer Exon 3 Forward (10 µM)
NRAS Primer Exon 3 Reverse (10 µM)
NRAS Primer Exon 4 Forward (10 µM)
NRAS Primer Exon 4 Reverse (10 µM)
NRAS Control Wild-Type Mix
NRAS Positive Control Exon 2
NRAS Positive Control Exon 3
NRAS Positive Control Exon 4
Bruksanvisning
Hämtas från webbplatsen*
http://world.Transgenomic.com/files/literature/482296-SV.pdf
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 7
5 Komponenter
5.1 Antal prover som kan testas med ett kit
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD har utformats för att kunna testa 100
reaktioner. Det totala antal prover som kan testas med kittet beror på den genomsnittliga
satsstorleken som testas vid ett tillfälle eftersom en uppsättning kontrollreaktioner (Wild-Typekontroller, positiva kontroller och kontroller utan templat) måste inkluderas i varje reaktionsplatta.
Tabellen nedan anger vilket antal prover som kan analyseras med ett NRAS-kit beroende på
storleken på en genomsnittlig provsats. I tabellen beaktas (a) de 9 kontrollerna (3x Wild-Type, 3x
positiva kontroller, 3 x kontroller utan templat) som krävs för varje körning och (b) gränsen på 100
reaktioner per kit.
OBS! Om flera plattor körs, måste en uppsättning med de 9 kontroller som anges ovan köras på
varje platta. Därför kräver två plattor sammanlagt 18 kontrollreaktioner, 3 plattor kräver 27
kontrollreaktioner, o.s.v.
Med en större provsatsstorlek ökar antalet prover som kan testas med ett kit, vilket minskar den
genomsnittliga reagenskostnaden per prov. Nedanstående tabell ger en vägledning till hur många
prover som kan testas med ett enda kit.
Provsatsstorlek
Antal
kontrollreaktioner
+ antal
provamplikoner
Antal
reaktioner
som krävs
er körning
Totalt antal
provsatskörningar
per kit
Totalt antal
prover som
testas per kit
1
9+3
12
8
8
2
9+6
15
6
12
3
9+9
18
5
15
4
9 + 12
21
4
16
5
9 + 15
24
4
20
5.2 DNA-sekvensering
Universal Sequencing Primer (PN 710153F och 710153R) tillhandahålls för användning vid DNAsekvensering av alla testade prover. De PCR-amplikoner som skapas före SURVEYOR Nucleasenedbrytning bör användas för sekvensering.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 8
6 Ytterligare nödvändig utrustning och reagenser
6 Ytterligare nödvändig utrustning och reagenser
Ytterligare komponenter och utrustning som behövs för att använda SURVEYOR Scan NRAS Kit
Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC omfattar följande:
DHPLC-system, kolumn, buffertar, DNA-storleksmarkör
- se Bilaga A.3.1 DHPLC-specifikationer för SURVEYOR Scan-användningar
beträffande egenskaper för ett lämpligt DHPLC-system för användning med detta kit
Vatten för molekylärbiologi
0,2 mL-PCR-rör, remsor eller platta med 96 brunnar
Mikropipetter
Pipettspetsar
Isbad
Vortexblandare
Mikrocentrifug
Termocykler
Agarosgeler och utrustning för agarosgelelektrofores
10% blekmedel eller liknande rengöringsmedel
7 Reagensberedning
Alla reagenser som ingår i detta kit är användningsklara. En del komponenter behöver tinas upp,
och/eller blandas i en vortexblandare eller mikrocentrifug före användning. Se mer information
under Analysprocedur nedan. Reagenser behöver kombineras för att producera Master Mixblandningar och reaktionsblandningar. En fullständig beskrivning ges under Analysprocedur
nedan.
8 Förvaring och hållbarhet
Detta kit ska förvaras i mellan -18 ºC och -25 °C i en frys med konstant temperatur tills det ska
användas. Observera utgångsdatumet på varje kit du erhåller. Använd inte kittet efter passerat
utgångsdatum.
SURVEYOR Nuclease-blandningen som bereds i Steg 7 av SURVEYOR Nuclease-nedbrytning
ska användas omedelbart eftersom SURVEYOR Nuclease W avaktiveras med tiden när det
förekommer tillsammans med övriga komponenter i SURVEYOR Nuclease-reaktionsblandning.
9 Varningar och försiktighetsåtgärder
Ingen av reagenserna i detta kit utgör en hälsorisk i de kvantiteter som förekommer.
Transgenomics dokument nr. MSD-710400 kan hämtas från
http://world.Transgenomic.com/files/literature/710400-SV.pdf
Det finns inga ämnen i detta kit med animaliskt eller humant ursprung som innebär en
infektionsrisk.
Detta kit får bara användas av personer som har utbildats i korrekta laboratorietekniker. Använd
alltid lämplig laboratorierock, engångshandskar och ögonskydd vid arbete med komponenterna i
detta kit. Efter användningen ska kittets komponenter avyttras som sjukvårdsavfall i enlighet lokala
lagar och föreskrifter.
Alikvoter av reagens som pipetterats från rören i detta kit är endast avsedda för engångsbruk.
Komponenterna i detta kit har validerats som fortfarande stabila efter 25 upptiningscykler. Använd
inte detta kit om antalet upptiningscykler har överskridits.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 9
10 Förberedande provinsamling, hantering och förvaring
10 Förberedande provinsamling, hantering och förvaring
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 4 och 4 CE IVD för DHPLC-systemet har validerats för
användning med DNA som utvunnits från formalinfixerade paraffininbäddade (FFPE) kolorektala
cancertumörprover. För optimal DNA-extraktion ska vävnaden fixeras i formalin i 14-24 timmar
innan den bäddas in i paraffin.
Tumörbiopsier är en heterogen blandning av tumörceller och icke-tumörceller. Vidare är själva
tumören en heterogen blandning a tumörceller med mutationer och tumörceller utan mutationer
mutations. Eftersom dessa somatiska mutationer kanske inte enhetligt distribueras genom hela
tumören kan den mutationsanalys som görs av olika sektioner i samma tumör ge olika resultat. För
att höja chanserna att detektera en mutation bör DNA-från vävnadens tumörregion isoleras genom
att endast tumörområdet skrapas från objektglaset med en ny, steril skalpell för varje nytt
objektglas.
För framgångsrik användning av detta kit bör den extraherade DNA:n uppfylla kriterierna i Att
tänka på avseende templat.
OBS! Extraherade DNA-prover som inte används för omedelbar analys ska förvaras vid -20 ºC till
-80 ºC.
11 Analysprocess
11.1 Somatisk mutationsdetektion med SURVEYOR Scan-kit - En översikt
Detektion och bekräftelse av mutationer med SURVEYOR Nuclease omfattar tre steg:
Steg 1 - Förbered PCR-amplikoner från muterat (test) och normalt (referens) DNA, och
fortsätt efter den sista PCR-amplifieringscykeln med att smälta alla dubbla strängar och
därefter långsamt låta dem svalna för optimal uppkomst av hetero- och homoduplexer
(heteroduplexer uppstår när en sträng i en Wild-Type-sekvens härdas med en stäng av en
muterad sekvens).
Steg 2 – Behandla den härdade heteroduplex/homoduplex-blandningen med SURVEYOR
Nuclease. SURVEYOR Nuclease skär av båda strängarna av heteroduplex DNA så att
DNA-fragment bildas. Control Wild-Type-DNA utgör, när den behandlas på liknande sätt,
en bakgrundskontroll.
Steg 3 - Analysera DNA-fragmenten på ett DHPLC-system. Formeringen av nya kluvna
produkter, till följd av förekomsten av en eller flera avvikelser, påvisas genom förekomsten
av ytterligare kromatografiska toppar. Migrationstiderna för de kluvna produkterna anger
storleken på fragmenten och därmed avvikelsens eller avvikelsernas placering.
12 Stegvisa anvisningar
12 Stegvisa anvisningar
12.1 Installation/kalibrering av DHPLC
När SURVEYOR Nuclease-plattan ställs in för analys av DHPLC, se Bilaga A.3 Systemkrav för
denaturering med HPLC (DHPLC).
12.2 Att tänka på före NRAS-provanalys
Innan prover körs på ett DHPLC-system måste en lämplig DNA-storleksmarkör köras för att
tillförsäkra att systemet fungerar korrekt. Laboratoriepersonal som använder instrumentet bör
kontrollera DNA-storleksmarkörens kvalitet innan analysen startas.
12.3 Att tänka på avseende templat
1. För FFPE isolerad DNA-templat, använd normala laboratorierutiner för att bedöma kvalitet
och kvantitet på extraherad DNA för att se till att det finns tillräcklig templat för PCR.
2. 260/280 absorptionsförhållandet ska vara >1,80
3. För att underlätta PCR-inställningen bör den effektiva koncentrationen av templat justeras
till cirka 12,5 ng/µL. Späd vid behov ut DNA-templaten med vatten för molekylärbiologi.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 11
12 Stegvisa anvisningar
12.4 Att tänka på avseende arbetsflöde
Kittet är avsett att möjliggöra analys av 100 reaktioner. Mindre provsatser kan köras, men
kitkontroller och en "kontroll utan templat" måste inkluderas med varje provsats. Det finns
tillräckligt med kontrollsubstans i kittet för 100 reaktioner av provomgångar av alla olika
storlekskombinationer.
I allmänhet bör bearbetning av alla prov utföras från början till slut enligt beskrivningen i den här
bruksanvisningen. Om bearbetningen av ett prov stoppas innan alla steg är klara, ska DNA
förvaras i -20°C vid angivna tillfällen. Man bör dock undvika att utsätta ett fruset prov för upprepad
upptining och förvaring (-18 till -25 °C) av PCR-amplifierad DNA eller SURVEYOR Nuclease
nedbrytningsprodukter under längre perioder (>1 vecka).
Analys av prover bör följa nedan illustrerade arbetsflöde:
Skrapa
Vävnaden
1
DNAisolering
och PCR
Gelelektroferes
2
3
Ange Robust/Svag PCR
4
5
SURVEYOR
Scan
Misslyckades
SURVEYOR Nuclease-och
DHPLC-analys
SURVEYOR Scan
Positiv
SURVEYOR Scan
Negativ
6
7
NVD
Sekvensbekräftelse
8
Kvalitetskontroll
för sekvensen
misslyckades
Kvalitetskontroll för
sekvensen godkänd
9
Mutationer i kodon
G12, G13, A59, Q61,
K117 eller A146
NVD
Figur 3: Arbetsflöde för analys med SURVEYOR Scan NRAS kit
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 12
12 Stegvisa anvisningar
Anmärkningar till figur 3
1. Isolera DNA från FFPE med vedertagen laboratoriepraxis.
2. Utför PCR och kontrollera DNA-kvaliteten genom att gelelektrofores.
3. Registrera om PCR-bandet är robust (≥20 ng/µL) eller svagt (<20 ng/µL).
Om det finns flera PCR-band ska ny genomisk DNA beredas från FFPE.
4. Gå vidare till SURVEYOR Nuclease-behandling och DHPLC systemanalys med prover
som angetts som antingen robust PCR eller svag PCR efter PCR-amplifiering.
Observera ett det vid en svag PCR-bestämning kan finnas otillräcklig DNA för att få
meningsfulla resultat genom DHPLC, men det kan finnas tillräckligt med DNA för
sekvensering.
5. Se Bilaga B – Felsökningsguide för exempel på misslyckade SURVEYOR Scanresultat. Alla prover med ett misslyckat SURVEYOR Scan-resultat bör köras om antingen
genom att:
a. upprepa PCR om det finns tillräckligt med genomisk DNA kvar
b. extrahera DNA på nytt från FFPE; detta bör vara andrahandsalternativet eftersom
det som regel inte är önskvärt att skära ytterligare ett FFPE-block.
c.
om ytterligare en sektion eller block används måste hela analysen upprepas
eftersom avvikelser i nedbrytningen kan bero på tumörheterogenitet.
6. Om det inte finns några synliga klyvningstoppar ska ett negativt SURVEYOR Scanresultat registreras, d.v.s. = ingen avvikelse detekterad.
7. Om ett prov visar SURVEYOR Nuclease klyvningsprodukter (matchar inte relevant WildType Control) ska dessa skickas till sekvenseringsbekräftelse.
8. Om sekvensbekräftelseanalysen inte godkänns, ska man antingen:
a. upprepa PCR om det finns tillräckligt med genomisk DNA kvar
b. extrahera DNA på nytt från FFPE; detta bör vara andrahandsalternativet eftersom
det som regel inte är önskvärt att skära ytterligare snitt från ett FFPE-block.
9. Om sekvensbekräftelsen är godtagbar betyder resultatet antingen:
a. Wild-Type-sekvens, d.v.s. ingen avvikelse detekterad (NVD -No Variant
Detected); eller
b. Avvikelse detekterad. Om sekvensbekräftelsen visar någon basförändring som
leder till aminosyraförändring vid:
i. kodon 12
ii. kodon 13
iii. kodon 59
iv. kodon 61
v. kodon 117; eller
vi. kodon 146
bedöm som positiv för NRAS-mutation.
Obs! Det är möjligt att ha en positiv SURVEYOR Scan-bestämning som också ger resultatet
"Ingen avvikelse detekterad" vid ett sekvensbekräftelsetest. Detektionsnivån (LOD) för
SURVEYOR Nuclease på ett DHPLC-system är så låg som 2% mutation i 98% Wild-Type-DNA för
vissa mutationer, medan LOD för sekvensering är cirka 10-25% mutation i 90-75% Wild-TypeDNA.
OBS! om ett prov är 100% muterat DNA, kan inga heteroduplex bildas och provet kommer att
visas som "Wild-Type". Tumörbiopsiprover kommer emellertid att innehålla Wild-Type-celler på
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 13
12 Stegvisa anvisningar
grund av tumörheterogenitet och/eller kontaminerande normal vävnad; 5% Wild-Type kan
detekteras av detta kit med spår som är identiska med 5% muterat DNA.
OBS! Positiva SURVEYOR Scan-resultat kan bero på andra basförändringar än de som har
befunnits vara NRAS-aktiverande. Dessa mutationer är sällsynta och måste bekräftas av en annan
metod för att fastställa om det positiva SURVEYOR Scan-resultatet är en NRAS-aktiverande
mutation eller ej.
OBS! Den formalinfixationsprocess som används vid beredning av FFPE-tumörbiopsiprover kan
orsaka deaminering av cytosin. Denna deaminering omvandlas cytocin till uracil. Polymerasen
kommer att "läsa" denna uracil som en tymin och införliva en adenin i de kopierade strängarna.
Detta kommer sedan att se ut som en mutation där den normala G nu har bytts ut mot A som
orsakar en G/C- till A/T-mutation, vilket är en artefaktmutation på grund av fixationsprocessen och
inte en äkta somatisk mutation. Detta förekommer sällan, men om de kopieras tidigt under PCRcykeln kommer de att "se ut som" mutationer. De upprepas ej vid omanalys.
Exempel på en potentiell cytosindeamineringsmutation som skulle kunna beaktas vid beslut av
patientvård NRAS A146T.
-
Kodon 146: GCC>ACC (A146T)
Därför rekommenderas att sådana mutationer bekräftas med duplikatanalys av samma genomiska
DNA eller att alla prover omfattas av duplikatanalys från analysens början.
12.5 Amplifieringsprotokoll
1. Transgenomics förblandade dNTP-lösning (PN 703065) tillhandahålls med en
koncentrationsgrad av 10 mM total deoxinukleotid (2,5 mM av var och en av de fyra
deoxinukleotiderna).
2. NRAS Exon 2, Exon 4A och Exon 4B Forward och Reverse PCR-primers (PN 710157F/R,
710154F/R and 710156F/R) levereras vid 10 µM.
3. Ta ut 10 µM-primrar, 10 mM dNTP:er och DNA Polymerase 10X PCR Buffer (PN 703315)
ur frysen och tina på is.
4. Vortexblanda alla komponenter efter upptining (~10 sekunder) så att de blandas noga,
centrifugera en kort stund (~10 sekunder) för att tillförsäkra att ingen vätska finns kvar på
rörens lock och lägg på is.
5. Förbered Master Mix-blandningen på is.
6. Använd följande tabell som vägledning för beredning av Master Mix för var och en av
reaktionerna NRAS Exon 2, NRAS Exon 3 och NRAS Exon 4:
Antal reaktioner:
Volymberäkning:
Vattenvolym (µL)
DNA Polymerase 10X PCR Buffer (µL)
dNTP (µL)
NRAS Primer Exon 2, 3 eller 4 Forward (µL)
NRAS Primer Exon 2, 3 eller 4 Reverse (µL)
DNA Polymerase (µL)
Total volym Master Mix
10
330**
50
40
25
25
10
48,0
**OBS! Användaren bör sträva efter att ha minst 25 ng DNA per 50 µL reaktion. När
de extraheras är DNA-koncentrationerna mindre än 12,5 ng/µL, öka volymen extraherats
DNA proportionerligt för att tillförsäkra 25 ng per reaktion. Minska vidare volymen vatten i
Master Mix-blandningarna med samma mängd för att få 50 µL per reaktion. Alla prover
som prepareras med dessa Master Mix-blandningar kommer att behöva extraherad
DNA som har spätts ut till ungefär samma lägsta koncentrationsgrad. Vi
rekommenderar inte att koncentrationer av extraherad DNA på <5 ng/µL används.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 14
12 Stegvisa anvisningar
7.
Beräkna nödvändiga volymer för varje Master Mix med användning av ovanstående
tabell. Observera att:
(a) För Master Mix 1, NRAS Exon 2, krävs ytterligare tre reaktioner för NRAS Control
Wild-Type, NRAS Positive Control Exon 2 samt NRAS Exon 2 kontroll utan templat
(NTC1).
(b) För Master Mix 2, NRAS Exon 3, krävs ytterligare tre reaktioner för NRAS Control
Wild-Type, NRAS Positive Control Exon 3 samt NRAS Exon 3 kontroll utan templat
(NTC2).
(c) För Master Mix 3, NRAS Exon 4, krävs ytterligare tre reaktioner för NRAS Control
Wild-Type, NRAS Positive Control Exon 4 samt NRAS Exon 4 kontroll utan templat
(NTC3).
OBS! Beakta att en Master Mix-volym som är något större är denna beräkning krävs
för att ge utrymme för visst svinn vid pipettering.
8. Märk 0,2 mL PCR-rören eller brunnarna i en platta med 96 brunnar med lämplig
provinformation.
9. Märk 2,0 mL centrifugeringsrör för preparering av Master Mix -blandning.
10. Tillsätt nödvändig volym vatten för molekylärbiologi till 2,0 mL centrifugeringsrör som är
märka Master Mix.
11. Tillsätt nödvändig mängd DNA Polymerase 10X PCR Buffer till Master Mix-rören.
12. Tillsätt nödvändig mängd 10 mM dNTP:er till Master Mix-röret.
13. Tillsätt nödvändig mängd NRAS Forward Primers till respektive Master Mix-rör.
14. Tillsätt nödvändig mängd NRAS Reverse Primers till respektive Master Mix-rör.
15. Ta ut DNA Polymerase (PN 703310) ur frysen.
16. Centrifugera DNA Polymerase i ~10 sekunder.
17. Vortexblanda DNA Polymerase i ~10 sekunder.
18. Tillsätt nödvändig mängd DNA Polymerase till Master Mix-rören.
19. Förslut Master Mix-rören.
20. Vortexblanda Master Mix-rören i ~30 sekunder och centrifugera dem under en kort stund i
~10 sekunder före användning.
21. Förvara på is tills det används.
22. Pipettera 48,0 µL (se anmärkning ovan i steg 69 av Master Mix i lämpliga brunnar och byt
pipettspets om du använder en enda kanalpipett. Se till att det inte spiller eller stänker
mellan brunnarna om en repeterpipett används. Förvara plattan på is.
23. Tillsätt 2,0 µL (se anmärkning ovan i steg 6) av varje provtemplat-DNA eller vatten (NTC no template control) till lämpliga brunnar. Använd separata pipettspetsar för varje prov och
undvik korskontaminering av proverna genom stänk. Förslut brunnarna med prov-DNA
och NTC med remsor med 8 proppar (om en platta med 96 brunnar används) eller förslut
0,2 mL PCR-rören. Se till att propparna sluter till ordentligt.
24. Endast därefter ska kittets kontrolltemplat-DNA-rör (PN 710131, 710136, 710137, 710138)
öppnas ett i taget. Pipettera 2,0 µL av var och en av kontrolltemplaten sist för att minska
risken för att något prov-DNA kontamineras. Förslut återigen varje brunn med remsor med
8 proppar (om en platta med 96 brunnar används) eller förslut 0,2 mL PCR-rören. Se till
att propparna sluter till ordentligt.
OBS! Det är god laboratoriepraxis att placera kontroller utan templat (NTC) i brunnar som
inte ligger intill Positive Control eller prover.
OBS! Se Bilaga A.1 Översikt av platta för SURVEYOR Scan kit för förslag hur en platta
med 96 brunnar kan ordnas för analys av alla KRAS och NRAS exoner 2-4.
25. Vortexblanda (~1/2 hastighet) i 10 sekunder.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 15
12 Stegvisa anvisningar
26. Centrifugera i 1-2 minuter för att tillförsäkra att alla lösningar samlas i botten av brunnarna
eller rören. Kontrollera att lösningarna ligger i botten av varje brunn eller rör. Centrifugera
på nytt i annat fall.
12.6 Termocykelprogram för amplifieringsprotokoll
1. Använd följande termocyklerprotokoll för PCR -amplifiering och heteroduplexformering:
Inledande denaturering
95 °C
Touchdown-amplifiering
15 cykler
30 cykler
1 cykel
95 °C
62 °C, -0,5 ºC/cykel
72 °C
Amplifiering
5 minuter
30 sekunder
30 sekunder
25 sekunder
95 °C
55 °C
72 °C
Slutgiltig förlängning
30 sekunder
30 sekunder
25 sekunder
72 °C
Heteroduplex formering
95 ºC
2 minuter
≤12 °C
2 minuter
Paus
12.7 Kvalitetskontroll av PCR-produkter
1. Kvaliteten och kvantiteten på amplikoner bör kontrolleras med gelelektrofores (eller
motsvarande) innan du fortsätter med SURVEYOR Nuclease-nedbrytning.
2. Analysera en alikvot av PCR-produkt tillsammans med flera olika mängder av en 100-bp
DNA-stege.
3. Använd stegen till att beräkna koncentrationen av amplifierad DNA.
4. Bara ett enda band >20 ng/µL som motsvarar huvud-PCR-produkten ska synas.
5. Om det finns flera band, se till att kvaliteten på tillsatt DNA-templat var tillräckligt god (se
Bilaga B – Felsökningsguide).
6. Om ingen produkt kan iakttas, se till att kvaliteten på tillförd DNA-templat var tillräckligt
god (se Bilaga B – Felsökningsguide). Om kvaliteten motsvarar specifikationerna, ska
du öka volymen på templatet till 4,0 µL per 50 µL reaktion (minska vattenmängden per
reaktion till 31,0 µL).
7. Inga PCR-produkter ska synas i kontrollprovet utan templat. Om DNA-produkt kan iakttas
är kontrollen troligen kontaminerad, se Bilaga B – Felsökningsguide.
8. Ange PCR som robust eller svag PCR.
a. Robust PCR ska ha ett enda band med minst 20 ng/µL.
b. Svag PCR ska ha ett enda band med mindre än 20 ng/µL.
c.
Fortsätt med SURVEYOR Nuclease-nedbrytning vid såväl robusta som svaga
PCR-bedömningar.
TIPS: I det här stadiet kan PCR-produkter förvaras vid -20 ºC eller kallare i upp till en
vecka.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 16
12 Stegvisa anvisningar
12.8 SURVEYOR Nuclease-nedbrytning
1. När PCR-provet har bedömts vara av tillräckligt hög kvalitet och kvantitet, utför
nedbrytning med SURVEYOR Nuclease enligt beskrivningen nedan.
2. Tina rören med 0,15 M MgCl2 Solution och SURVEYOR Enhancer Cofactor på is.
3. Tillsätt 10,0 µL av varje PCR-amplifierat prov till ett nytt 0,2 mL PCR-rör eller brunn på en
platta med 96 brunnar.
4. Bered en ny blandning 0,15 M MgCl2 Solution, SURVEYOR Enhancer Cofactor,
SURVEYOR Enhancer W2 och SURVEYOR Nuclease W (SURVEYOR Nucleaseblandning).
Använd följande tabell som en vägledning för beredning av Master Mix för SURVEYOR Nucleasenedbrytning för analys av flera prover. Nedanstående exempel har volymer för en Master Mix för
10 prover.
Tänk på att en Master Mix-volym som är något större än denna beräkning krävs för att ge utrymme
för svinn vid pipettering.
Antal SURVEYOR Nuclease-nedbrytningsreaktioner:
Volymberäkning:
0,15 M MgCl2 Solution (µL)
SURVEYOR Enhancer Cofactor (µL)
SURVEYOR Enhancer W2 (µL)
SURVEYOR Nuclease W (µL)
Total volym Master Mix:
Tillsätt 5 µL SURVEYOR Nuclease Master Mix till varje
PCR-amplifierat prov (µL)
Total volym SURVEYOR Nucleasenedbrytningsreaktion:
10
10,0
10,0
10,0
20,0
50,0
10,0
15,0
a. Centrifugera alla reagenser före användning.
b. Vortexblanda varje reagens försiktigt före pipettering; centrifugera under en kort stund
i ~10 sekunder efter varje vortexmoment.
c.
För varje nedbrytning, tillför följande komponenter till ett 0,2 mL PCR (eller större)
mikrocentrifugeringsrör.
1,0 µL 0,15 M MgCl2 Solution (PN 708027)
1,0 µL SURVEYOR Enhancer Cofactor (PN 708049)
1,0 µL SURVEYOR Enhancer W2 (PN 710161)
2,0 µL SURVEYOR Nuclease W (PN 710160)
Eller tillsätt 5 µL Master Mix som beretts enligt ovanstående tabell.
5. Vortexblanda försiktigt Master Mix för SURVEYOR Nuclease-nedbrytning i 10 sekunder
på låg hastighet.
6. Centrifugera Master Mix för SURVEYOR Nuclease-nedbrytning i 10 sekunder på låg
hastighet.
7. Placera Master Mix för SURVEYOR Nuclease-nedbrytning på is tills den är redo att
användas.
OBS! Master Mix för SURVEYOR Nuclease-nedbrytning som beretts i steg 7 ska
användas omedelbart eftersom SURVEYOR Nuclease W blir inaktivt över tid vid
förekomst av de övriga komponenterna i Master Mix för SURVEYOR Nucleasenedbrytning.
8. Pipettera 5,0 µL-alikvot av Master Mix för SURVEYOR Nuclease-nedbrytning i varje rör
eller brunn med 10,0 µL alikvot av amplifierad PCR-produkt (se steg 3 ovan).
12 Stegvisa anvisningar
9. När pipetteringen är klar, centrifugera 0,2 mL PCR-rör eller plattan med 96 brunnar i 10
sekunder.
10. Vortexblanda försiktigt 0,2 mL PCR-rör eller plattan med 96 brunnar i 10 sekunder.
11. Centrifugera i 10 sekunder med låg hastighet (detta moment är extra viktigt om
nedbrytningen sker i ett instrument som saknar uppvärmt lock).
12. Inkubera vid 42 °C i 30 minuter.
13. Tillsätt 1,0 µL SURVEYOR Stop Solution (PN 708030) i varje rör eller brunn och
vortexblanda försiktigt (total SURVEYOR Nuclease-reaktionsvolym är 16,0 µL).
TIPS: SURVEYOR nedbrytningsprodukter kan lagras vid ≤ -20 ºC i upp till en vecka.
14. Ladda provnedbrytningarna i ett DHPLC-system.
OBS! För föreslagna gradientinställningar för DHPLC-systemet för analys av SURVEYOR
Nuclease-nedbrytningar,
besök
http://world.Transgenomic.com/diagnostic-tools/geneticanalysis-kits/crc-rascan-kits-eu/DHPLCsystemsettings.
13 Kontrollrutiner
13.1 Kvalitetskontroll av SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD
Kontroll-DNA-plasmider ingår i detta kit för att tillhandahålla kvalitetskontroller vid speciella steg i
analysprocessen. För amplifieringsprotokollet, erbjuder dessa kontroller ett sätt att säkerställa
att Master Mix-blandningarna är korrekt preparerade och att amplifieringen fungerar korrekt.
Kontrollsubstanser utan templat (där vatten tillförs istället för DNA-templat) krävs också för att
kontrollera förekomsten av eventuell kontamination av kitkomponenter från ett ovidkommande
DNA-templat.
I nedbrytningsstadiet av SURVEYOR Nuclease, tillhandahåller amplikonerna från kontroll-DNAplasmider en effektiv kontroll av klyvningsreaktionsförhållanden (beredning av Master Mix för
SURVEYOR Nuclease-nedbrytning och inkubationsförhållanden) har varit tillfredsställande. I
analysstadiet ger DHPLC-systemets kromatogram av SURVEYOR Nuclease-nedbrutna
kontrollamplikoner en vägledning huruvida klyvningsprodukttopparna motsvarande de
mutationerna i NRAS exoner 2, 3 och 4 kommer att elueras även vid låga nivåer (se Figurer 4-6).
Klyvningsprodukttoppar som motsvarar andra mutationer i NRAS exoner 2, 3 och 4 kan elueras i
något avvikande positioner.
Om PCR-amplikonerna inte motsvarar resultaten som beskrivs i Kvalitetskontroll av PCRprodukter, se Bilaga B - Felsökningsguide eller kontakta Transgenomics tekniska support innan
du går vidare med ytterligare provanalyssteg.
13.2 Användning av kontrollplasmid-DNA
Detta kit är utrustat med fyra kontroll-DNA:
NRAS Control Wild-Type; PN 710441
NRAS Positive Control Exon 2; PN 710442
NRAS Positive Control Exon 3; PN 710443
NRAS Positive Control Exon 4; PN 710444
Dessa kontroll-DNA är plasmider med tillägg. De Positive Control innehåller två plasmider vardera:
en blandning av NRAS Control Wild-Type och en mutationsklon som skiljer sig från Wild-Type vid
ett enstaka baspar. Kontrollerna tillhandahålls i separata flaskor, var och en med en koncentration
5
på 10 kopior/µL.
NRAS Exons 2, 3 och 4 Forward och Reverse PCR-primrar som krävs för PCR-amplifiering
levereras separat i kittet. Följ instruktionerna i Amplifieringsprotokoll, SURVEYOR Nucleasenedbrytning och Analys av NRAS Exons 2, 3 & 4 med SURVEYOR Nuclease för användning av
dessa kontroller.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 18
12 Stegvisa anvisningar
VI REKOMMENDERAR STARKT ATT NYA ANVÄNDARE FÖRST UTFÖR
EXPERIMENTEN MED ENBART KONTROLLSUBSTANSERNA INNAN TESTNING
GÖRS PÅ GENOMISKA PROVER
14 Tolkning av resultat
14.1 Analys av NRAS Exons 2, 3 & 4 med SURVEYOR Nuclease
För jämförelse och kontroll ska man ALLTID utföra SURVEYOR Nuclease-nedbrytning på var och
en av kontrollerna (Wild-Type och Positive Control), en kontroll utan templat, samt prov-DNA som
ska köras med samma provplatta i samma DHPLC-system.
I nedbrytningsstadiet av SURVEYOR Nuclease, tillhandahåller amplikonerna från dessa
kontrollplasmid-DNA en effektiv kontroll att förhållandena för klyvningsreaktion (beredning av
SURVEYOR Nuclease-blandning och inkuberingsförhållanden) var tillfredsställande. I
analysstadiet ger DHPLC-systemets kromatogram av SURVEYOR Nuclease-nedbrutna
kontrollamplikoner en vägledning om var DNA-fragmenten efter klyvningen vid dessa specifika
mutationers avvikelseställe kommer att elueras, även vid låga nivåer (se Figurer 4-6).
Om antingen PCR-amplikonerna eller SURVEYOR Nuclease-klyvningsfragment som härletts av
kontroll-DNA inte motsvarar beskrivna resultat, se Bilaga B -Felsökningsguide eller kontakta
Transgenomics tekniska support innan nästa steg i provanalysen tas.
Nedanstående exempel är endast i illustrationssyfte och ska INTE användas för att fastställa
identiteten hos någon viss mutation. Bekräftelse av identiteten hos en mutation krävs för att
oåterkalleligt fastställa förekomsten av en specifik basförändring i exonerna 2, 3 eller 4 i NRASgenen.
SURVEYOR Nuclease klyver vid alla avvikelser som uppstår till följd av heteroduplex
formering mellan Wild-Type och muterat DNA, inte bara mutationer i exoner 2, 3 eller 4.
SURVEYOR Nuclease bekräftar att en avvikelse förekommer. Mutationens specifika
basförändringsidentitet krävs för bestämning av NRAS-aktiverande status och den måste
bekräftas med en annan metod, t.ex. sekvensering.
14.2 Granskning av SURVEYOR Scan-resultat
Inspektera kromatogrammen och jämför de för Wild-Type och Positive Control med provets.
Fastställ om provets kromatogram liknar Wild-Type-mönstret eller ej. Om det är annorlunda bör
provet betraktas som "SURVEYOR Scan-positivt" och skickas till DNA-sekvensanalys. Exempel
på sådana prov finns i Figur 4-6 och Bilaga B – Felsökningsguide, Problem 7 och 8.
Ett prov med SURVEYOR Nuclease-mönster som skiljer sig från mönstret för Wild-Type bör
skickas för sekvensbekräftelse även om det inte är identiskt med den positiva kontrollen. Ett
exempel på ett sådant prov finns i Bilaga B – Felsökningsguide, Problem 7.
Zooma vid behov in på området av intresse och lägg provets kromatogram ovanpå Wild-Type
Control för den amplikonen.
Notera skillnader mellan Wild-Type Control och det analyserade provet.
Viktigt! Efter en grundlig genomgång av varje prov bör datagranskaren undersöka om
intilliggande prover i analysplattan har identiska positiva SURVEYOR Scan-resultat. Om identiska
positiva resultat förekommer kan de bero på korskontamination av prov eller kontroll och analysen
måste upprepas.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 19
14 Tolkning av resultat
14.3 Exempel på resultat
Exempel på resultat som erhållits med SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för
DHPLC visas i Figurer 4-6, nedan. I dessa exempel har den metod som beskrivs i Stegvisa
anvisningar med användning av WAVE® 4500-system med såväl UV- som fluorescensdetektorer,
följts exakt. För föreslagna gradientinställningar för DHPLC-system för analys av SURVEYOR
Nuclease-nedbrytningar, besök http://world.Transgenomic.com/diagnostic-tools/genetic-analysiskits/crc-rascan-kits-eu/DHPLCsystemsettings.
Figur 4A
NRAS Control Wild-Type
NRAS-kontroll Exon 2
OkluvenProv 1, NRAS Exon 2
200-bp Prov 2, NRAS Exon 2
amplikonDNA-storleksmarkör
DHPLC
genomflöde
G12D-avkastning
88- och 148-bpfragment
Okluven
236-bp
amplikon
DHPLCavrinning
Figur 4B
G12D-avkastning
88- och 148-bpfragment
NRAS Control Wild-Type
NRAS-kontroll Exon 2
OkluvenProv 1, NRAS Exon 2
200-bp Prov 2, NRAS Exon 2
amplikonDNA-storleksmarkör
Okluven
236-bp
amplikon
Figurerna 4A och 4B: WAVE DHPLC-analys med UV-detektion (Figur 4A) och
fluorescensdetektion (Figur 4B) av SURVEYOR Nuclease-nedbrytning av NRAS Positive
Control Exon 3 och Wild-Type Control samt CRC DNA som isolerats från FFPE-sektioner.
Vid visuell granskning av kromatogrammen ska de nedbrutna proverna jämföras med NRAS
Control Wild-Type (blå linje). NRAS Positive Control Exon 2 (grön linje) är en blandning av WildType och muterade G12D-plasmider som ger nedbrytningstoppar på 88 och 148 bp; denna
kontroll visar att nedbrytningsmomentet i SURVEYOR Nuclease fungerar och visar det område i
kromatografen som bör undersökas visuellt för att fastställa om ett prov ska skickas för DNAsekvensanalys. När nedbrytningsmönster jämförs för proverna 1 och 2 med Wild-Type-nedbrutet
elektroferogram är det uppenbart att prov 1 (röd linje) har sannolika mutationer och bör
sekvenseras för att bekräfta förekomst eller frånvaro av en mutation i relevant kodon. Prov 2 (svart
linje) har liknande kromatogram som de som observeras för NRAS Control Wild-Type och behöver
inte skickas för DAN-sekvensanalys. Observera att sekvenseringsresultatet är det definitiva
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 20
14 Tolkning av resultat
resultatet eftersom det kan finnas andra ej relevanta mutationer som kan ge samma
fregmentstorlekar.
Figur 5A
NRAS Control Wild-Type
NRAS-kontroll Exon 3
OkluvenProv 1, NRAS Exon 3
200-bp Prov 2, NRAS Exon 3
amplikonDNA-storleksmarkör
DHPLC
genomflöde
Q61K-avkastning
78- och 125-bpfragment
DHPLCavrinning
Okluven
203-bp
amplikon
Figur 5B
Q61K-avkastning
78- och 125-bpfragment
NRAS Control Wild-Type
NRAS-kontroll Exon 3
OkluvenProv 1, NRAS Exon 3
200-bp Prov 2, NRAS Exon 3
amplikonDNA-storleksmarkör
Okluven
203-bp
amplikon
Figurerna 5A och 5B: WAVE DHPLC-analys med UV-detektion (Figur 5A) och
fluorescensdetektion (Figur 5B) av SURVEYOR Nuclease-nedbrytning av NRAS Positive
Control Exon 3 och Wild-Type Control samt CRC DNA som isolerats från FFPE-sektioner.
Vid visuell granskning av kromatogrammen ska de nedbrutna proverna jämföras med NRAS
Control Wild-Type (grön linje). NRAS Positive Control Exon 3 (blå linje) är en blandning av WildType och muterade Q61K-plasmider som ger nedbrytningstoppar på 78 och 125 bp; denna
kontroll visar att nedbrytningsmomentet i SURVEYOR Nuclease fungerar och visar det område i
kromatografen som bör undersökas visuellt för att fastställa om ett prov ska skickas för DNAsekvensanalys. När nedbrytningsmönster jämförs för proverna 1 och 2 med Wild-Type nedbrutet
elektroferogram är det uppenbart att prov 1 (röd linje) har en sannolik mutation och bör
sekvenseras för att bekräfta förekomst eller frånvaro av en mutation i relevant kodon. Prov 2 (svart
linje) har liknande kromatogram som de som observeras för NRAS Control Wild-Type och behöver
inte skickas för DNA-sekvensanalys. Observera att sekvenseringsresultatet är det definitiva
resultatet eftersom det kan finnas andra ej relevanta mutationer som kan ge samma
fregmentstorlekar.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 21
14 Tolkning av resultat
Figur 6A
DHPLC
genomflöde
NRAS Control Wild-Type
NRAS-kontroll Exon 4
OkluvenProv 1, NRAS Exon 4
200-bp Prov 2, NRAS Exon 4
amplikonDNA-storleksmarkör
Okluven
233-bp
amplikon
DHPLCavrinning
A146T-avkastning
68- och 165-bpfragment
Figur 6B
A146T-avkastning
68- och 165-bpfragment
NRAS Control Wild-Type
NRAS-kontroll Exon 4
OkluvenProv 1, NRAS Exon 4
200-bp Prov 2, NRAS Exon 4
amplikonDNA-storleksmarkör
Okluven
233-bp
amplikon
Figurerna 6A och 6B: WAVE DHPLC-analys med UV-detektion (Figur 6A) och
fluorescensdetektion (Figur 6B) av SURVEYOR Nuclease-nedbrytning av NRAS Positive
Control Exon 4 och Wild-Type Control samt CRC DNA som isolerats från FFPE-sektioner.
Vid visuell granskning av kromatogrammen ska de nedbrutna proverna jämföras med NRAS
Control Wild-Type NRAS Control Wild-Type (grön linje). NRAS Positive Control Exon 4 (blå linje)
är en blandning av Wild-Type och muterade A146T-plasmider som ger nedbrytningstoppar på 68
och 165 bp; denna kontroll visar att nedbrytningsmomentet i SURVEYOR Nuclease fungerar och
visar det område i kromatografen som bör undersökas visuellt för att fastställa om ett prov ska
skickas för DNA-sekvensanalys. När nedbrytningsmönstren för prov 1 och 2 jämförs med WildType nedbrutet elektroferogram, är det tydligt att proverna 1 och 2 (röda och svarta linjer)( har
likartade kromatogram som NRAS Control Wild-Type och de behöver inte skickas för DNAsevkensanalys. Observera att för positiva Surveyor Scan-resultat är sekvenseringsresultatet det
definitiva resultatet eftersom det kan finnas andra ej relevanta mutationer som kan ge samma
fregmentstorlekar.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 22
15 Prestationsegenskaper
15 Prestationsegenskaper
15.1 LOD för mutationer med SURVEYOR Scan-kit
Validering av SURVEYOR Scan-kitten för DHPLC-plattformar med användning av plasmidkloner
av alla indicerade mutationer har visat att SURVEYOR Nuclease-toppar kan detekteras i en
blandning av 2-5% mutation i en Wild-Type-bakgrund.
Automatiserad sekvenseringsbestämning av både framåt och bakåt -strängar misslyckas ofta med
att detektera mutationer i blandningar med mindre än 10% Wild-Type-DNA. Tillsammans med
resultaten från SURVEYOR Nuclease är det möjligt att med högre säkerhet tolka elektroferogram
om 5-10% för mutant sekvensering.
Om analysen visar ett positivt SURVEYOR Scan-resultat, men utan detekterbar KRAS- eller
NRAS-mutation med DNA-sekvensering, rekommenderar vi att resultatet "Ingen avvikelse
detekterad" registreras. Ytterligare detaljer finns i avsnittet Att tänka på avseende
arbetsflödet.
15.2 Sekvensbekräftelse
Fortsätt med sekvensbekräftelse för alla positiva SURVEYOR Scan-resultat för att fastställa
sekvensidentiteten för KRAS Exon 2-, 3- eller 4-mutationer.
Fortsätt inte med sekvenseringsinformation om SURVEYOR Scan-resultatet var negativt. Provet
kan rapporteras som Wild-Type eller ingen avvikelse detekterad.
Universal Sequencing Primer som inkluderas i kittet är avsedda för sekvensbekräftelse.
Framåtprimer är PN 710153F (Universal Sequencing Primer 1) och bakåtprimer är PN 710153R
(Universal Sequencing Primer 2).
15.3 Analysprocessens begränsningar
Kontaminerande ämnen som överförs genom extraktion av formalinfixerade paraffininbäddade
prover kan inverka negativt på PCR-amplifieringen och nedbrytningsprocessen med SURVEYOR
Nuclease. Rutinerna för kvalitetskontroll som beskrivs under Kvalitetskontroll av PCR-produkter
säkerställer att extraherad DNA är lämplig för användning i detta kit.
Detta kit har validerats för analys av formalinfixerade paraffininbäddade kolorektala
cancertumörprover. Det har inte validerats för diagnostisk användning med andra cancertyper eller
med färska eller frysta biopsiprover.
Läs i Bilaga B- Felsökningsguide, nedan, för felsökning av onormala resultat och information om
faktorer som kan påverka analysen.
Försiktighet måste iakttas för att undvika överföring och korskontamination med detta kit. På grund
av analysmetodens extrema känslighet, måste försiktighetsåtgärder vidtas vid följande punkter:
•
Se till att alla prover hanteras på ett sådant sätt att korskontamination mellan prover inte
kan förekomma
•
Arbeta i en PCR-arbetsstation eller annat lämpligt utrymme där arbetsområdet kan
utsättas för UV-ljus innan PCR-amplifieringsreaktionerna ställs in.
•
Använd en separat PCR-arbetsstation eller ett separat rum för att öppna proverna efter
PCR-amplifiering för kvalitetskontroll med gelelektrofores.
•
Förberedelse för SURVEYOR Nuclease-nedbrytning bör göras i ett separat rum eller på
en annan PCR-arbetsstation än den arbetsstation där inledande PCR ställdes in.
•
Se till att kittets plasmidkontroller hanteras separat från testproverna under alla stadier i
analysen.
o
Kontrollera att alla lösningar, kontroll utan templat, samt prov-DNA-brunnar är
förslutna innan rören med kontrollplasmid-DNA öppnas.
15 Prestationsegenskaper
•
o
KONTROLLER SKA HANTERAS SIST. Tillsätt kontrollplasmid-DNA till relevanta
rör först EFTER DET ATT ALLA kontroller utan templat och provbrunnar har
förslutits.
o
När kontroll-DNA-rören har förslutits ska ALLA rör och lock torkas av med ett
medel som utplånar DNA (t.ex. 10% blekmedel) innan de överförs till ett annat
område.
Se till att pipettering av prover i plattor med 96 brunnar inte möjliggör provkontamination
av intilliggande brunnar på grund av stänk vid blandningen eller på grund av att
pipettspetsarna inte bytts ut.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 24
Bilaga A
Bilaga A
A.1 Översikt av platta för SURVEYOR Scan kit
Den översikt av plattan som föreslås nedan är för SURVEYOR Scan-analys för alla sju KRAS och
NRAS exoner samtidigt i 10 prover.
Förklaring: Ex = Exon; WT = Wild-Type; Mut = Mutation; NTC = No Template Control (kontroll
utan templat)
A.2 Kontrollernas DNA-stämplar
Sekvenserna med en "stämpel" anges nedan.
Förklaring: De vanligaste mutationsområdena markeras med Lila. Sekvenser med
VERSALER är kodande baser; ej kodande baser anges med gemener.
Kontrollernas genetiska "stämpel" är markerad i Gult; denna avvikelse från NRAS WildType-sekvensen, i en region som inte förväntas ha mutationer, kan användas för att
felsöka provkontamination av Positive Control. Se Bilaga B - Felsökningsguide,
Problem 8, för ett exempel på en SURVEYOR Scan-härledning av sådan
kontamination.
NRAS Exon 2-"stämpel"
Amplikonstorlek: 236 bp. För att skapa NRAS har Exon 2-kontrollplasmidens genetiska
stämpel aca ändrats till tgt. Kodon 12 och 13 har också markerats nedan.
ccatgtggttcttgctggtgtgaaATGACTGAGTACAAACTGGTGGTGGTTGGAGCAGGTGGTgtt
NRAS Exon 3-"stämpel"
Amplikonstorlek: 203 bp. För att skapa NRAS har Exon 3-kontrollplasmidens genetiska
stämpel GAC ändrats till CTG. Kodon 59 och 61 har också markerats nedan.
ACAGCTGGACAAGAAGAGTACAGTGCCATGAGACTGCAA
NRAS Exon 4-"stämpel"
Amplikonstorlek: 233 bp. För att skapa NRAS har Exon 4-kontrollplasmidens genetiska
stämpel CAA ändrats till GTT. Kodon 117 och 146 har också markerats nedan.
AACAAGTGTGATTTGCCAACAAGGACAGTTGATACAAAAGTTGCCCACGAACTGGCCAAGAGTTACGGG
ATTCCATTCATTGAAACCTCAGCCAAG
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 25
Bilaga A
A.3 Systemkrav för denaturering med HPLC (DHPLC)
A.3.1 DHPLC-specifikationer för SURVEYOR Scan-användningar
Följande specifikationer är minimikrav för DHPLC-systemets specifikationer för att utföra analyser
med SURVEYOR Scan KRAS- och NRAS-kittet.
Tillförselsystem för högpresterande gradientlösning
• Binär gradient kapacitet; högtryck eller lågtryck
• Flödeshastighetskontroll, minsta område: 0,7 – 1,6 mL/min
• Flödeshastighetsprecision: ± 2% (H2O vid 20 ºC)
• Lösningsavgasare
Autoprovtagare
• Temperaturkontroll för kylning av plattor, inställningsbar: 4 till 14 ºC
• Injektionsvolym: 5-50 µL
Separationskassett
• Utformad för separation av dsDNA-fragmentstorlek, fragmentstorlekar 50 till 250 bp
Ugn med temperaturkontroll med hög precision
• Temperaturområde: 40 till 70 ºC
• Temperaturprecision: ± 0,2 ºC
• Temperatur-reproducerbarhet: ± 0,2 ºC
• Linjäritet över hela temperaturområdet: ± 2,0 ºC
Detektionsalternativ 1
• UV-/VIS-detektor
• Område för våglängd: 190-700 nm
• UV-källa: Deuteriumlampa
Detektionsalternativ 2
• Fluorescensdetektor
• Område för våglängd: excitation: 200-85 nm; emission: 250-900 nm
• Fluorescenskälla: 150 W xenonlampa
•
Pump för fluorescerande färg
• Fast flödeshastighet vid 0,1 mL/min – 20%/+50%
• Lågt pulsationsflöde
A.3.2 Systemdrift
För inställning och drift av DHPLC-systemet, läs och följ tillverkarens rekommendationer för analys
av dsDNA-fragment i storleksområdet 50 bp till 250 bp, med inriktning på storleksurskiljning om 10
bp eller bättre. Detta är storleksområdet för fragment efter SURVEYOR Nuclease-nedbrytning
med användning av detta kit.
För föreslagna gradientinställningar för DHPLC-system för analys av SURVEYOR Nucleasenedbrytningar, besök http://world.Transgenomic.com/diagnostic-tools/genetic-analysis-kits/crcrascan-kits-eu/DHPLCsystemsettings.
A.3.3 Underhåll av DHPLC-kassetter
Följ tillverkarens anvisningar beträffande underhåll av DHPLC-kassetter.
OBS! Analys av SURVEYOR Nuclease-reaktioner kräver mer frekventa och striktare
rengöringsprotokoll än de som används för vanlig PCR-analys. Konsultera riktlinjerna för ditt
DHPLC-system för mer information.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 26
Bilaga A
A.4 Laboratorieinstallation för PCR-analyser
För tillförlitliga och kontaminationsfria PCR-resultat ska god laboratoriesed iakttas när PCRlaboratoriet utformas.
När laboratoriet planeras ska behovet av avstånd mellan förberedelse för PCR-amplifiering och
aktiviteter efter amplifiering beaktas. De är viktigt att separera (i) DNA-isolering; (ii) PCRamplifiering; och (iii) aktiviteter efter PCR, t.ex. att öppna amplifierade prover vid förberedelse för
att köra geler och förbereda andra analyser, t.ex. SURVEYOR Nuclease-nedbrytningar och DNAsekvensering.
Det är också viktigt att laboratorieutrustning och material tilldelas varje område och att de endast
används i det specifika området. Genom att torka av ytorna med 10% (v/v) blekmedel, som
blandas varje vecka, kommer underlättas eliminering av DNA-fragment ≤ 500 bp som templat för
PCR. Det kan vidare vara gynnsamt att behandla plastmaterial och lösningar med UV-ljus med
kort våglängd i 7-10 minuter med användning av en UV-korslänkare.
Obs! Enzymer och DNA som ska amplifieras får inte UV-behandlas.
Genom att använda lämplig skyddsutrustning, byta handskar ofta samt torka av handskbeklädda
händer med 10% (v/v) blekmedel före inträde i en arbetsstation kommer att var till stor hjälp för att
reducera risken för kontamination.
Det bör minst finnas ett arrangemang som liknar det tvårumsarrangemang som visas i
nedanstående diagram som är specifikt utformat för PCR och analys med SURVEYOR Nuclease.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 27
Bilaga A
A.5 Litteraturlista
®
1. Amgen News Release (2013) New analyses identify predictive biomarkers for Vectibix
(panitumumab) in patients with metastatic colorectal cancer.
http://wwwext.amgen.com/media/media_pr_detail.jsp?-year=2013&releaseID=1820728
2. Peeters M et al (2013) Massively parallel tumor multigene sequencing to evaluate
response to panitumumab in a randomized phase III study of metastatic colorectal cancer.
Clin Cancer Res. 19 1902-12.
3. De Roock W et al (2010) Association of KRAS p.G13D mutation with outcome in patients
with chemotherapy-refractory metastatic colorectal cancer treated with cetuximab. JAMA
304 1812-20.
4. Peeters M et al (2013) Mutant KRAS codon 12 and 13 alleles in patients with metastatic
colorectal cancer: assessment as prognostic and predictive biomarkers of response to
panitumumab. J Clin Oncol. 31 759-65.
5. Andre T et al (2013) Panitumumab combined with irinotecan for patients with KRAS WildType metastatic colorectal cancer refractory to standard chemotherapy: a GERCOR
efficacy, tolerance, and translational molecular study. Ann Oncol. 24 412-9.
6. Loupakis F et al (2009) KRAS codon 61, 146 and BRAF mutations predict resistance to
cetuximab plus irinotecan in KRAS codon 12 and 13 Wild-Type metastatic colorectal
cancer. Br J Cancer 101 715-21.
7. De Roock W et al (2010) Effects of KRAS, BRAF, NRAS, and PIK3CA mutations on the
efficacy of cetuximab plus chemotherapy in chemotherapy-refractory metastatic colorectal
cancer: a retrospective consortium analysis. Lancet Oncol. 11 753-62.
8. Qiu P et al (2004) Mutation detection using Surveyor™ nuclease. Biotechniques 36 702707
9. Kuang Y et al (2009) Noninvasive detection of EGFR T790M in gefitinib or erlotinib
resistant non-small cell lung cancer. Clin. Cancer Res. 15 2630-6
10. Mitani N et al (2007) Surveyor nuclease-based detection of p53 gene mutations in
haematological malignancy. Ann. Clin. Biochem. 44 557-9
11. Engelman JA et al (2006) Allelic dilution obscures detection of a biologically significant
resistance mutation in EGFR-amplified lung cancer. J. Clin. Invest. 116 2695-2706
Se även http://world.Transgenomic.com/files/literature/482146.pdf
SURVEYOR Nuclease och dess tillämpningar.
för
referenser
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
om
Sid. 28
Bilaga B
Bilaga B
Felsökningsguide
Effektiv användning av SURVEYOR Scan kit för DHPLC är beroende av att ett antal olika steg
genomförs framgångsrikt. Ett av de mest avgörande stegen är PCR-amplifiering som måste
resultera i produktion av specifika, jämnstora DNA i tillräcklig kvantitet för att kunna detekteras
efter hybridisering och klyvning. Detta beror i sin tur på kvaliteten på det ursprungliga provet. Att
utföra analysen med DNA som inte motsvarar kvalitetsvillkoren avseende kvalitet och kvantitet
rekommenderas inte.
OBS! Om det är första gången du använder SURVEYOR Nuclease ska du utföra experimenten i
avsnittet Använda kontrollplasmid-DNA efter det att du har läst och förstått avsnittet Stegvisa
anvisningar. Se till att du har resultaten från kontrollplasmid-DNA innan du kontaktar
Transgenomics tekniska support.
Denna felsökningsguide omfattar en rad problem som du kan komma att stöta på medan du
använder SURVEYOR Scan-kitter för DHPLC samt förslag på hur du kan lösa dem.
Läs i instrumenthandboken för DHPLC-systemet för detaljerad information om användning och
underhåll av instrumentet. Handboken innehåller specifika processer för att kontrollera och
underhålla kolumnprestation och inkluderar felsökningsinformation.
Problem 1 – Låg PCR-avkastning eller avsaknad av PCR-produkt vid analys
på agarosgel
LÅG PCRAVKASTNING
God
PCRAvkast
-ning
Dålig
PCRavkast
-ning
MÖJLIG ORSAK
LÖSNING
Dålig kvalitet på DNAtemplat
Gör om reningen av DNA; gå igenom den
använda reningsmetoden Om FFPE-extraherat
material är alltför fragmenterat kan alternativa
FFPE-block behövas.
För mycket RNA i
provet som orsakar att
DNA-koncentrationen
beräknas för högt
Upprepa RNase-behandlingen av DNA-provet och
upprepa DNA-reningen.
Termocyklern är inte
kalibrerad
Kalibrera termocyklern.
Otillräckligt med
templat
Öka mängden templat.
RNAband
OBS! Högkvalitativ DNA från FFPE ska användas. DNA bör ha en koncentration på25 ng/µL
enligt bestämning genom absorption av 260 nm, ha en absorptionsgrad vid 260/280 nm som
överstiger 1,8 samt vara högre än 90% DNA (d.v.s. fritt från den mesta tRNA- och rRNAkontaminationen enligt visuell bedömning på agarosgel). Förvara DNA-prover vid en temperatur
mellan -20 °C och -80 °C.
Analys av DNA-templat som extraherats från paraffininbäddad vävnad kräver iakttagande av ett
flertal försiktighetsåtgärder. Extraherat DNA kan behandlas med uracil DNA-glykosylas för att
förebygga amplifiering av DNA-fragment som innehåller deaminerade C-rester. En hög
procentandel av det A260-absorberande material som extraheras från paraffininbäddad vävnad
kommer ofta inte att amplifieras väl under PCR. Genom att använda en större mängd DNA till
starten kan man ofta producera en tillräcklig mängd med amplifieringsprodukt. En annan sak att tänka
på är att välja FFPE-tumörsektioner med en hög andel tumörceller. Mikrodissektion kan också
användas, men detta är tidskrävande och torde inte rekommenderas vid generell laboratorietestning.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 29
Bilaga B
Problem 2 – Flera PCR-produkter vid analys på agarosgel
FLERA PCR-PRODUKTER
God
PCRavkast
-ning
MÖJLIG ORSAK
LÖSNING
För låg härdningstemperatur
Kontrollera termocyklerns
kalibrering.
Flera
PCRband
OBS! PCR ska producera en tillräckligt stor avkastning (>20 ng/µL) av EN ENSTAKA amplifierad
typ av korrekt storlek. DNA Polymerase och DNA Polymerase 10X PCR Buffer som
tillhandahålls i detta kit måste användas för PCR. Amplikoner från kontroller ska brytas ned
med SURVEYOR Nuclease och köras för att utesluta falska bakgrundsstörningar genom visuell
jämförelse av elektroferogramprofiler (se Exempel på resultat, Figurer 4-6). Undersök all
amplifierad DNA-produkt före nedbrytningen med gelelektrofores (eller DHPLC-systemanalys) för
att vara säker på att det är av en enda typ av förväntad storlek
Problem 3 – Inga klyvningsprodukter observeras vid analysen efter
behandling av heteroduplex med SURVEYOR Nuclease
INGA KLYVNINGSPRODUKTER
Position
för saknade
heteroduplex
MÖJLIG
ORSAK
LÖSNING
Andelen
avvikande mål
är för liten
Kontrollera
analysprocessen genom
att använda
kontrollsubstanserna.
Ineffektiv
formering av
heteroduplex
Följ korrekt PCR- och
hybridiseringsprocess.
Använd nyss
hybridiserad DNA i
SURVEYOR Nucleasenedbrytning.
Utför nya PCRamplifiering med genom
att (1) använda samma
kvantitet DNA-templat;
(2) öka mängden startDNA; eller (3) isolera
färsk DNA från samma
eller en annan FFPEsektion.
Ej beskuren
homoduplextopp
Overksam
SURVEYOR
Nuclease
Utför kontrollreaktionen
för att kontrollera
enzymfunktionen.
Använd endast färska
SURVEYOR Nuclease
Master Mix-blandningar.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 30
Bilaga B
OBS! SURVEYOR Nuclease klyver huvudsakligen avvikelser i heteroduplex. Andelen
heteroduplex i förhållande till homoduplex i det hybridiserade provet avgör storleken på
SURVEYOR Nucleasenedbrytningssignal. Om NRAS-mutationen förekommer i väldigt låga
koncentrationer i det genomiska DNA-provet, kan signalen vara för svag för att ge ett positivt
resultat.
Det är viktigt att se till att hybridiseringssteget ingår i termocykelprogrammet (se
Amplifieringsprotokoll) för att maximera effektiviteten i heteroduplexformationen. Heteroduplex
är väldigt ineffektivt formade under vanliga PCR-reaktioner.
OBS! Förhållandet mellan signal och bakgrundsstörningar är normalt tillräckligt högt för att
detektera mutationer som förekommer i en liten andel av de totala DNA-templaten. Det är möjligt
att detektera 1 till 2% av muterat DNA. Figurer 4-6 visar nedbrytningsprodukter som genereras
med homoduplex och heteroduplex NRAS Positive Control-DNA (inkluderas i detta kit) samt
FFPE-prover på ett WAVE DHPLC 4500-system. Klyvningsprodukterna syns tydligt som två nya
toppar eluerande med de förväntade storlekar som kan beräknas i förhållande till DNAstorleksmarkören.
Varning! Kommersiellt tillgängliga PCR-buffertar varierar kraftigt när det gäller innehåll
sammansättningen anges ofta inte av leverantörerna. Ett flertal buffertar är INTE kompatibla
SURVEYOR Nucleas på grund av pH-värdet eller förekomsten av tillsatser, ytaktiva ämnen
andra skyddade ingredienser. ANVÄND INTE någon annan polymeras eller
polymerasbuffert än de som tillhandahålls i detta kit.
och
med
eller
10X
Problem 4 – Höga bakgrundsstörningar efter behandling med SURVEYOR
Nuclease
HÖGA BAKGRUNDSSTÖRNINGAR
MÖJLIG ORSAK
LÖSNING
Undermåligt
hybridiseringssteg
Gör så här:
1. Se till att DNAkoncentrationen är i en
nivå >25 ng/µL.
2. Upprepa steget med
heteroduplex formering
och var noga med att
följa rekommenderad
process; se 12.7.1.
DHPLCgenomflöde
Prov
med mycket
störningar
i bakgrunden
DHPLCtvätt
Mängden DNA är för
låg
Kontrollera avkastning och
kvalitet på DNA-templat
Obestämda PCRprodukter
Kontrollera avkastning och
kvalitet på DNA-templat
SURVEYOR
Enhancer W2
och/eller
SURVEYOR
Enhancer Cofactor
har förlorat verkan
Kontrollera kittets
utgångsdatum
Obs! Det kan hända att SURVEYOR Nuclease rispar dubbelsträngad DNA vid slumpvist
matchade ställen. Detta orsakar störningar efter nedbrytningen. Denna aktivitet dämpas av
SURVEYOR Enhancer W2 och dess Cofaktor utan att ha andra negativa effekter på klyvningen av
avvikelser. SURVEYOR Enhancer W2 och SURVEYOR Enhancer Cofactor ingår i detta kit och
ska alltid användas.
Då denna typ av rispning fortfarande förekommer, genereras mindre toppar på DHPLC-systemet.
Dessa kan upptäckas genom att man jämför kontrollnedbrytningar av homoduplex med
provnedbrytningar.
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 31
Bilaga B
Problem 5 – Nedbrytningstoppar i negativa kontroller medSURVEYOR
Nuclease
NEDBRYTNINGSTOPPAR I NEGATIVA
KONTROLLER
Nedbrytningstoppar
med svag signal
i Wild-Typekontroll
DHPLCgenomflöde
Ej beskuren
homoduplextopp
MÖJLIG ORSAK
LÖSNING
Kittets innehåll har
kontaminerats med
KRAS-amplikoner
eller
plasmidkontroller
Kassera alla
kitkomponenter
och använd ett
nytt kit.
DHPLCtvätt
Kontakta
Transgenomics
tekniska support för
att diskutera
eventuella
anledningar och
källor till
kontaminationen
Problem 6 – Misslyckade SURVEYOR Nuclease-resultat
SURVEYOR NUCLEASE-NEDBRYTNING AV
POSITIVE CONTROL HAR MISSLYCKATS
Inga tydliga
nedbrytningstoppar
Ej beskuren
homoduplextopp
MÖJLIG ORSAK
LÖSNING
SURVEYOR
Nuclease tillsattes
inte
Bryt ned ett nytt
prov
SURVEYOR
Nucleasenedbrytning
skedde vid fel
temperatur
Bryt ned ett nytt
prov
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 32
Bilaga B
Problem 7 – Oväntade toppar i SURVEYOR Nuclease-nedbrytningskurva
SURVEYOR NUCLEASE-NEDBRYTNING AV POSITIVE
CONTROL HAR MISSLYCKATS
MÖJLIG
ORSAK
Mutation på
ovanlig plats
Ej beskuren
homoduplextopp
LÖSNING
Sekvensera
provet för att
bekräfta
mutationen
Oväntade
nedbrytningstoppar
DHPLCgenomflöde
Förväntade
nedbrytningstoppar
DHPLCtvätt
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 33
Bilaga B
Problem 8 – Prover som kontaminerats av Positive Control
Nedbrytningsmönster som överensstämmer med
förekomst av blandade Positive Control stämplade
region och Wild-Type heteroduplex
MÖJLIG
ORSAK
Dålig
pipetteringsteknik
Prov 1
Prov 2
Prov 3
LÖSNING
Var försiktig vid
pipettering för att
undvika
korskontamination
Kontrollera
kontrollstämplarnas
sekvensregioner för
kontamination av
Positive Control.
Kodon 12 och 13-region
Kontrollstämpelns region
Prov 1
NVD i
kodon
12 och 13
Stämpel
detekterad
Prov 2
c.34G>T
p.G12C, 30%
Ingen stämpel
detekterad
Prov 3
NVD i
kodon
12 och 13
Ingen stämpel
detekterad
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 34
Varumärken & upphovsrätt
Bilaga B
Beställningsinformation
Produktnummer
Produktnamn
Storlek
710104
SURVEYOR Scan KRAS Kit Exon 2 CE IVD
100 reaktioner
710106
SURVEYOR Scan KRAS Kit Exons 3 & 4 CE IVD
100 reaktioner
710400
SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD
100 reaktioner
710077
CRC RAScan Combination Kit för KRAS & NRAS Exons 2, 3 &
4 CE IVD
230 reaktioner
Kontaktuppgifter
Huvudkontor
Transgenomic, Inc.
12325 Emmet Street
Omaha
Nebraska 68164
United States of America
Europa
Transgenomic Limited
40 Watt Road
Hillington Park, Hillington
Glasgow G52 4RY
United Kingdom
Tel:
(888) 233-9283* eller +1 (402) 452-5400
+1 (402) 452-5401
Fax:
E-post: [email protected]
Tel::
+44 141 892 8800
Fax:
+44 141 883 5967
E-post: [email protected]
*gäller bara Nordamerika
www.Transgenomic.com
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 36
Bilaga B
översättning Ansvarsfriskrivning
Transgenomic, Inc. har gjort allt för att säkerställa riktigheten i denna översättning. Om du har frågor om någon information
i denna översatta version av handboken, se English Instructions for Use for the SURVEYOR ® Scan NRAS Kit Exons
2, 3 & 4 for the DHPLC System - 482296(EN) http:// world.Transgenomic.com/files/literature/482296-EN.pdf och / eller
kontakta Transgenomic vid support @transgenomic.com.
Varumärken & upphovsrätt
SURVEYOR Nuclease: Denna produkt tillverkas med en exklusiv licens under amerikanska patent 6 391 557; 5 869 245;
deras utländska motsvarigheter och andra sökta patent. Användning av SURVEYOR Nucleasekräver en licens från
Transgenomic. Utbildnings-, ideella och vinstdrivande organisationer har begränsad rätt att använda SURVEYOR
Nuclease för forskningsändamål genom inköp av denna produkt. Återförsäljning eller andra tillämpningar är strängt
förbjudna. Var vänlig kontakta Transgenomic för ytterligare information.
DNA Polymerase: Användning av denna produkt omfattas av ett eller flera av följande patent i US och motsvarande patent
utanför USA:, 5,789,224, 5,618,711, 6,127,155 samt patentanspråk utanför USA motsvarande amerikanskt patent nummer
4,889,818. Köp av denna produkt inkluderar en begränsad, ej överlåtbar immunitet mot intrångsanspråk enligt ovanstående
patent vid användning av endast denna mängd produkt för köparens egna interna forskning. Ingen rättighet under något
annat patent (t.ex. de patenterade 5' nukleasprocessanspråken i de amerikanska patenten 5 210 015 och 5 487 972),
ingen rätt att utföra någon patenterad metod, och ingen rätt att utföra kommersiella tjänster av något slag, inklusive bland
annat rapportering av resultaten av köparens aktiviteter mot avgift eller andra kommersiella överenskommelser, förmedlas
vare sig uttryckligen, underförstått eller på grund av tidigare dispens. Denna produkt är endast avsedd för forskning.
Diagnostisk användning under Roches patent kräver en separat licens från Roche. Ytterligare information om köp av
licenser kan erhållas genom att kontakta Director of Licensing, Applied Biosystems, 850 Lincoln Centre Drive, Foster City,
California 94404, USA.
Transgenomic, SURVEYOR och WAVE är registrerade varumärken och Navigator, spirallogotypen samt Advancing
Personalized Medicine är varumärken som tillhör Transgenomic, Inc. Alla övriga varumärken tillhör sina respektive
innehavare.
© 2013 Transgenomic, Inc. Med ensamrätt. Tryckt i USA.
Dokumentnr. 482296(SV) rev-02
Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD för DHPLC
Sid. 37
