IMAGEN Herpes
Simplex Virus (HSV)
K610611-2
SV
Direkt immunofluorescenstest för detektion av HSV 1 och HSV 2.
1. AVSEDD ANVÄNDNING
IMAGEN™ Herpes Simplex Virus typningstest är ett kvalitativt
direkt immunofluorescenstest för detektion och typning av HSV
1 och HSV 2 i cellkulturer.
2. SAMMANFATTNING
Herpes simplex virus är ett DNA-virus som innehåller en
ikosaedral nukleokapsid omgiven av ett hölje som innehåller
lipider. Humant HSV klassificeras inom familjen Herpesviridae och
tillhör underfamiljen Alphaherpesvirinae. Genuset Simplexvirus
innefattar två typarter av humant herpes simplex virus, HSV 1 och
HSV 21.
HSV är en vanlig och universell infektion hos människor
och associeras med ett stort antal kliniska sjukdomar hos
både immunokompetenta och immunokomprometterade
individer. Både HSV 1 och 2 påträffas ofta i lokala vesikulära
infektioner på hud, bindhinnor och slemhinnor i munnen och
på könsorganen2,3,4. När den primära infektionen har upplösts
kan viruset fortsätta att existera i latent form i nervvävnader
och kan återuppträda under vissa förhållanden så att symtomen
återkommer. Primära infektioner i det centrala nervsystemet kan
leda till herpes encefalit som kan ha dålig prognos om de inte
behandlas tidigt4,5. Primär infektion under sen graviditet kan leda
till svår neonatal infektion. Dessa infektioner har hög morbiditetsoch mortalitetsfrekvens4,5.
Direkta immunofluorescenstester, t.ex. IMAGEN Herpes Simplex
Virus, som använder specifika monoklonala antikroppar
utgör en snabb, sensitiv och specifik metod för detektion
och differentiering av HSV 1- och HSV 2-isolat i cellkulturens
monolager. IMAGEN Herpes Simplex Virus använder specifika
monoklonala antikroppar för att detektera epitoper av HSVglykoproteiner som är specifika för antingen HSV 1 eller HSV 2.
3. TESTPRINCIP
IMAGEN HSV-reagenser innehåller monoklonala antikroppar
som konjugerats till fluoresceinisotiocyanat (FITC). Konjugerade
antikroppar binds specifikt till konserverade epitoper av
antingen HSV 1 eller HSV 2. Reagenserna används i en enstegig,
direkt immunofluorescensteknik. Prov inkuberas med FITCkonjugerade antikroppsreagenser i 30 minuter. Sedan tvättas
överflödig reagens av med fosfatbuffrad saltlösning (PBS). De
färgade områdena monteras och visas i mikroskop med hjälp
av epifluorescensgenomlysning. Om Herpes Simplex Virus
av typ 1 eller 2 är närvarande, syns en karakteristisk starkt
äppelgrön fluorescens i kulturceller, i kontrast till den röda
bakgrundsfärgningen av oinfekterade celler. Reagensen med
vilken specifik fluorescens observeras indikerar om viruset är HSV
1 eller HSV 2.
Tillkännagivanden
De monoklonala antikroppar som användes i detta test
tillverkades av Department of Pathology, University of Cambridge,
Cambridge, Storbritannien.
4. DEFINITIONER
Följande
symboler
produktinformationen.
använts
genomgående
i
Katalognummer
Se bruksanvisningen
N
Hos immunokomprometterade patienter kan svåra och
livshotande systemiska infektioner uppstå, ibland på flera organ5.
Innehållet räcker till <N> tester
Tillverkare
Säker och effektiv antiviral terapi används vanligtvis för
behandling av primär och återkommande HSV-infektion3,6. Därför
är en snabb laboratoriediagnos av HSV viktig för att stödja vård
och behandling av smittade patienter.
Identifikation av HSV-typer spelar en viktig roll i undersökning
och övervakning av smittade patienter4. De huvudsakliga
diagnosmetoder som används innefattar isolering av livskraftiga
virus i cellkulturlager som inokuleras med kliniska prov eller direkt
detektion av virus eller virusproteiner i kliniska prov4,7.
har
Medicinsk apparat för in vitro-diagnostik
Använd före
Batchkod
Temperaturbegränsning
5. MEDFÖLJANDE REAGENSER
Isolering av HSV från kliniska prov kan genomföras i ett antal
olika cellinjer inklusive diploida fibroblast, njurceller från kanin,
veroceller och humana amniotiska celler, i vilka HSV replikerar
snabbt och uppvisar en cytopatisk effekt7.
50 - Varje sats innehåller tillräckligt mycket material för att
testa 50 förberedda cellkulturer.
Flera tekniker har använts för att detektera och bekräfta
identifiering av isolat och för att skilja mellan HSV 1 och HSV 2.
Dessa innefattar DNA-hybridisering, restriktionsenzymanalys,
neutraliseringstester och kultur i embrioniserade ägg4,7. Dessa
tekniker kan vara komplexa, krävande och ofta illa anpassade för
rutinmässig användning.
5.1.
Immunofluorescenstester med HSV 1- eller HSV 2-specifika
monoklonala antikroppar har beskrivits för identifiering och
typning av HSV-isolat och för detektion av HSV i cellkulturer innan
cytopatisk effekt (CPE) visar sig7,8,9.
- Satsens hållbarhet står på etiketten på ytterförpackningen.
INNEHÅLL I IMAGEN HSV-TEST
Instruktion för användning
2 x 2 brunnpositiva kontrollobjektglas som
innehåller acetonfixerade humana fibroblastceller som infekterats med antingen HSV 1
eller HSV 2.
En flaska av var och en av följande:
3mL monteringsvätska. Monteringsvätskan
innehåller en fotoblekningshämmare i glycerollösning (pH 10,0).
1,4mL IMAGEN HSV typ 1 reagens. Reagensen
innehåller renade murinmonoklonala antikroppar specifika för HSV 1, konjugerade till
FITC. Konjugaten förbereds i en proteinstabiliserad buffertlösning (pH 7,5) som innehåller
Evans Blue färgämne som kontrastfärg och
15mmol/L natriumazid som konserveringsmedel.
1,4mL IMAGEN HSV typ 2 reagens. Reagensen
innehåller renade murinmonoklonala antikroppar specifika för HSV 2, konjugerade till FITC.
Konjugaten förbereds i en proteinstabiliserad
buffertlösning (pH 7,5) som innehåller Evans
Blue färgämne som kontrastfärg och 15mmol/L
natriumazid som konserveringsmedel.
5.2. FÖRBEREDELSE, FÖRVARING OCH ÅTERANVÄNDNING AV
SATSENS INNEHÅLL
Alla oanvända komponenter i satsen bör förvaras i enlighet med
nedanstående instruktioner för att säkerställa optimal prestanda.
5.3. POSITIVA KONTROLLOBJEKTGLAS Positiva kontrollobjektglas är individuellt förpackade i förseglade
aluminiumförpackningar fyllda med kväve. Förvara oanvända
objektglas vid 2-8°C. Objektglasförpackningar ska lämnas
i rumstemperatur (15-30°C) i 5 minuter innan de öppnas.
Färga objektglaset omgående efter öppning av förpackningen.
5.4. MONTERINGSVÄTSKA Klar för användning. Förvara oanvänd monteringsvätska vid 2-8°C.
Monteringsvätska ska stå i rumstemperatur (15-30°C) i 5 minuter
innan den används.
/
5.5. REAGENS 1 OCH 2 Klar för användning. Förvara oanvänd reagens 1 och 2 vid 2-8°C.
Reagenser 1 och 2 bör förvaras i mörker vid 2-8°C och ska stå
i rumstemperatur (15-30°C) i 5 minuter före användning.
6. YTTERLIGARE REAGENSER
6.1. REAGENSER
Aceton (för fixering).
Fosfatbuffrad saltlösning (PBS) pH 7,5 för tvätt av färgade prov
och för provförberedelse.
6.2. TILLBEHÖR
Allmänt
Teflonbelagd glas objektglas med enkel 6mm diameter och
(100 bilder per låda) kan erhållas från din lokala återförsäljare
(kodnummer S611430-6).
IMAGEN HSV Positive Control Slide (kodnummer S611030-2).
För kulturbekräftelse
Sterila bomullstoppar, virustransportmedium och en behållare för
provtagning, transport och odling av HSV.
Cellkulturlinjer rekommenderade för odling och isolering av HSV.
7. Erforderlig utrustning som ej medföljer
Precisionspipett och engångsspetsar för tillförsel av 25µL
Tvättbad
Täckglas som täcker brunnen med 6mm diameter
Icke-fluorescerande immersionsolja
Epifluorescensmikroskop med filtersystem för FITC (max.
exciteringsvåglängd 490nm, genomsnittlig emissionsvåglängd
520nm) och linser för x200 - x500 förstoring
Inkubator inställd på 37 °C
8. FÖRSIKTIGHETSÅTGÄRDER
- För in vitro-diagnostik. Den som utför en analys med
denna produkt måste vara utbildad i dess användning och ha
erfarenhet av laboratorieprocedurer.
8.1. SÄKERHETSÅTGÄRDER
8.1.1
IMAGEN HSV reagenser innehåller 15 mmol/L
natriumazid, som är ett gift. Natriumazid kan reagera
med bly- och kopparinstallationer och bilda högexplosiv
metallazid. Kassera alltid material som innehåller azid
genom att spola med stora mängder vatten.
8.1.2
HSV på det positiva kontrollobjektglaset har befunnits
vara icke-smittsamt i cellkultur. Objektglaset bör dock
hanteras och kasseras som potentiellt smittsamt.
8.1.3
Evans Blue färgämne finns i reagensen. Ämnet kan
vara cancerframkallande och kontakt med huden bör
undvikas.
8.1.4
Var försiktig när du använder monteringsvätskan
eftersom den kan orsaka hudirritation. Om kontakt sker,
bör huden tvättas med vatten.
8.1.5
Du bör inte äta, dricka, röka, förvara eller laga mat eller
sminka dig inom arbetsområdet.
8.1.6
Pipettera inte material med munnen.
8.1.7
Bär engångshandskar när du hanterar kliniska prov och
infekterade celler och tvätta alltid händerna när du har
arbetat med smittsamma material.
8.1.8
Kasta alla kliniska prov och reagenser i enlighet med
lokal lagstiftning.
8.1.9
Ett datablad om säkerhet finns tillgängligt för
professionella användare.
8.2. TEKNISKA FÖRSIKTIGHETSÅTGÄRDER
8.2.1
Komponenter får inte användas efter det Använd
före-datum som står på etiketterna. Blanda inte olika
reagenssatser.
8.2.2
Reagenserna
tillhandahålls
med
fasta
arbetskoncentrationer. Testprestanda påverkas negativt
om reagenser modifieras eller förvaras under andra
förhållanden än de som anges i avsnitt 5.
8.2.3
Förbered ny fosfatbuffrad saltlösning (PBS) efter behov
samma dag som den ska användas.
8.2.4
Undvik mikrobkontaminering av reagenser.
8.2.5
Reagenserna får inte frysas.
9. PROVTAGNING OCH FÖRBEREDELSE AV PROV
Provtagning och förberedelse av prov är av fundamental vikt
vid diagnos av HSV-infektion hos cellkultur. Prov måste tas
från infektionsplatsen så att de innehåller så mycket infekterat
material som möjligt.
9.1. KLINISKA PROV
Provtagning
Ta kliniska prov från infektionsplatsen. Sår och lesioner ska gnidas
ordentligt med en vanlig bomullstopp för att få upp infekterade
celler och exsudat från sårets eller lesionens bas. Blåsor ska
öppnas försiktigt, vätskan sugas upp på bomullstoppen och
lesionens bas gnidas med bomullstoppen. Bomullstopparna
placeras i det virustransportmedium som används normalt och
skickas till laboratoriet för bearbetning så snart som möjligt.
Inokulering av cellkulturer
Prov som tagits för diagnos av HSV-infektion ska inokuleras i
de cellinjer som normalt används i laboratoriet i enlighet med
etablerade laboratoriemetoder och regelbundet undersökas för
cytopatisk effekt (CPE).
Förberedelse av objektglas
Om CPE som är förenlig med HSV-infektion observeras, ska
cellkulturens monolager skördas när ca. 70% av cellerna är
angripna.
Skrapa ned cellagret i flytande odlingssubstrat med en steril
pipett. Avlagra cellerna genom centrifugering vid 200g i 10
minuter vid rumstemperatur (15-30°C) och ta bort supernatantet.
Tvätta cellerna genom att resuspendera cellavlagringen i PBS (se
avsnitt 6.1) och upprepa centrifugeringen. Ta bort supernatantet
och resuspendera cellavlagringen i en liten mängd ny PBS för att
upprätthålla hög celldensitet.
Placera 25µL alikvot av suspensionen i brunnar på teflonbelagda
objektglas. Det krävs två brunnar per patientprov. Låt torka vid
rumstemperatur (15-30°C) och fixera i ny aceton i 10 minuter vid
rumstemperatur (15-30°C). Om provet inte färgas omedelbart,
ska det sparas över natten vid 4°C eller frysas vid –20°C för längre
perioder.
10. TESTPROCEDUR
SE AVSNITT 8.2 TEKNISKA FÖRSIKTIGHETSÅTGÄRDER INNAN DU
UTFÖR TESTPROCEDUREN.
10.1. TILLSÄTTNING AV REAGENS 1 OCH 2
Tillsätt 25µL HSV 1-reagens till en 6mm diameter brunn med det
fixerade cellpreparatet och 25µL HSV 2-reagens till den andra
6mm diameter brunnen med fixerat preparat (se avsnitt 9) eller
tillsätt på det positiva kontrollobjektglaset. Se till att reagenserna
täcker hela brunnområdet.
10.2. FÖRSTA INKUBERINGEN
Inkubera objektglasen med reagens i en fuktig kammare i
30 minuter vid 37°C . Låt inte reagensen torka på provet, eftersom
detta orsakar icke-specifik färgning.
10.3. TVÄTTNING AV OBJEKTGLAS
Tvätta av överflödig reagens med fosfatbuffrad saltlösning (PBS)
(se avsnitt 6.1) och tvätta sedan försiktigt objektglaset i ett
omrörande bad som innehåller PBS i 5 minuter. Tappa av PBS och
låt objektglaset lufttorka vid rumstemperatur (15-30°C).
10.4. TILLSÄTTNING AV MONTERINGSVÄTSKA
Häll en droppe IMAGEN monteringsvätska i mitten av varje brunn
och placera ett täckglas över monteringsvätskan och provet. Se till
att inga luftbubblor förekommer.
10.5. AVLÄSNING AV OBJEKTGLAS
Undersök hela 6mm diameter brunnområdet som innehåller
färgade cellpreparat med hjälp av ett epifluorescensmikroskop.
Fluorescens enligt beskrivningen i avsnitt 11 ska kunna ses
vid x200-x500 förstoring. (För bästa resultat bör objektglas
undersökas omgående efter färgning, men kan sparas vid 2-8°C, i
mörker, i högst 24 timmar).
11. TOLKNING AV TESTRESULTAT
11.1. KONTROLLER
11.1.1 Positivt kontrollobjektglas
Vid färgning och visning så som beskrivs i avsnitt 10 ska det
positiva kontrollobjektglaset uppvisa fluorescerande celler
med intracellulär äppelgrön fluorescens mot en bakgrund av
kontrastfärgat material. Positiva kontrollobjektglas används för
att kontrollera att färgningsproceduren har utförts korrekt.
11.1.2 Negativ kontroll
Om ett negativt kontrollobjektglas behövs, rekommenderas
oinfekterade celler av samma typ som användes för odling och
isolering av HSV. Cellerna bör förberedas och fixeras så som
beskrivs i avsnitt 9.1 och färgas så som beskrivs i avsnitt 10.
11.2. KLINISKA PROV
11.2.1 HSV-infekterade cellers utseende
Infekterade celler uppvisar äppelgrön fluorescerande
intracellulära cytoplasmiska granulat. Hos vissa infekterade celler
kan denna karakteristiska cytoplasmiska fluorescens åtföljas av en
“kanteffekt” som orsakas av färgning av cellmembranet.
Oinfekterade celler färgas röda med Evans Blue kontrastfärg.
11.2.2 Tolkning
En positiv diagnos görs när minst en fixerad färgad cell uppvisar
det fluorescensmönster som beskrivs i avsnitt 11.2.1 med
antingen HSV typ 1- eller HSV typ 2-reagens. Minst 50 celler i den
cellkultur som testas bör kunna ses i varje objektglasbrunn innan
ett negativt testresultat rapporteras. Se avsnitt 11.2.3 om det inte
finns tillräckligt många celler.
11.2.3 Otillräckligt antal celler
Om det inte finns tillräckligt många celler i objektglaspreparatet,
ska återstoden av cellkulturen centrifugeras vid 200g i 10 minuter
vid rumstemperatur (15-30°C). Resuspendera i en mindre volym
PBS innan preparatet (25µL) fördelas igen på 6 mm diameter
brunnen på ett teflonbelagt objektivglas enligt beskrivningen i
avsnitt 9.1. Alternativt kan ett nytt kliniskt prov tas.
12. Begränsningar i utförandet
12.1. Använd endast monteringsvätskan
IMAGEN HSV-testet.
som
medföljer
12.2. Fluorescensbildens utseende kan variera beroende på
den typ av mikroskop och ljuskälla som används.
12.3. Alla reagenser tillhandahålls med fasta arbetskoncentrationer.
Testprestanda kan påverkas om reagenserna ändras
på något sätt, eller om de inte förvaras i enlighet med
rekommendationerna i avsnitt 5.
12.4. 25 µL reagens bör användas för att täcka en 6mm
diameter brunn. En mindre volym kan göra det svårt att
täcka provområdet och kan minska sensitiviteten.
12.5. Om HSV inte detekteras, kan detta bero på faktorer som
t.ex. provtagning vid fel tidpunkt under sjukdomens
lopp, felaktig provtagning och/eller hantering av prov,
misslyckande med cellodling, o.s.v. Ett negativt resultat
utesluter inte möjligheten av HSV-infektion.
12.6. Testresultat bör tolkas tillsammans med information från
epidemiologiska studier, klinisk utvärdering av patienten
och andra diagnostiska procedurer.
13. FÖRVÄNTADE VÄRDEN
Herpes simplex virus förekommer hos människor världen över
och över 80% av den vuxna befolkningen i västländerna har haft
en primär infektion som hos de flesta varit asymtomatisk10. Efter
primär infektion får cirka 45% av individer med oral infektion
och 60% av patienter med genital infektion återkommande
herpesinfektioner3. HSV har isolerats från genitalområdet hos
0,3–5,4 % av män och 1,0–8,0% av kvinnor som har besökt en
klinik för sexuellt överförda sjukdomar11,12. Patienter med okulär
herpes simplex-infektioner är en av de största anledningarna till
remittering till oftalmologiska kliniker.3
Vid symtomatisk primär eller återkommande infektion kan
HSV-lesioner synas på huden, på slemhinnor i munnen, svalget,
könsorganen eller ögat. Vid infektion hos spädbarn eller
immunokomprometterade individer kan infektionen spridas till
många områden, inklusive organ som lungor, hjärna, lever, mjälte,
o.s.v.
HSV kan odlas från vätska i vesikulära lesioner eller utsöndringar
från infekterade områden (t.ex. ögon, svalg eller könsorgan).
Dessutom kan HSV odlas från infekterad vävnad i disseminerad
herpes, t.ex. hjärnbiopsi från patienter med herpes simplex
encefalit.
14. SPECIFIK PRESTANDAKARAKTERISTIK
14.1. MONOKLONAL ANTIKROPPSREAKTIVITET MED HSV TYP
1 OCH 2
De monoklonala antikroppar som används i testet har visat sig
reagera med typspecifika konserverade epitoper av antingen HSV
1 antigen eller HSV 2 antigen.
14.2. Specifika egenskaper
IMAGEN
HSV
typningstest
utvärderades
vid
ett
kliniskt studiecentrum och resultaten jämfördes med
restriktionsendonukleaslokalisering. Vid detta sjukhuscentrum
togs prov från olika områden inklusive näsa, hals, tunga, mun,
hud, bindhinnor, perineum, urinrör, penis, vulva, blygdläppar,
vagina och äggstock från 187 patienter som besökte sjukhuset.
Prov (bomullstoppar) placerades i transportmediet och
transporterades till laboratoriet för cellodling och isolering av
HSV. Vid studiecentret observerades alla 187 cellkulturer med
mikroskop för typisk HSV-cytopatisk effekt och utvärderades med
IMAGEN HSV-reagenser för att fastställa om HSV 1 eller HSV 2
var närvarande. HSV 1 bedömdes vara närvarande om en eller
fler celler uppvisade typisk fluorescens med HSV 1-reagens. HSV
2 bedömdes vara närvarande om en eller fler celler uppvisade
typisk fluorescens med HSV 2-reagens (se avsnitt 11).
Detektion av HSV
Av de 187 prov som utvärderades var 60 (32,1%) positiva enligt
både referenskulturen och IMAGEN HSV-typningstestet (tabell
14.2.1). Av de positiva resultaten kom 55,0% från kvinnor
och 45,0% från män. Fördelningen av positiva resultat enligt
isoleringsområde för HSV var 83,3% genital, 13,3% oral och 3,4%
från andra anatomiska områden.
Av de positiva genitalproven var 40,0% HSV 1 och 60,0% HSV 2.
Alla positiva orala prov var HSV 1.
Positiva resultat uppnåddes med båda metoder i alla fall, vilket
gav ett värde på 100% för korrelation, specificitet, sensitivitet
samt positiva och negativa prediktionsvärden.
Tabell 14.2.1
Jämförelse av testresultat från IMAGEN HSVtest och standardmetoder för cellkultur
TEST
Cellkultur
IMAGEN HSV
Antal prov
RESULTAT
Pos
Neg
Neg
Pos
Neg
Pos
60
127
0
(32,1) (67,9) (0)
( ) Uttryckt som procent av alla analyserade prov.
Pos
Neg
0
(0)
Typning av HSV 1 och HSV 2
Totalt 43 kulturisolat av HSV var tillgängliga för testning med
IMAGEN HSV-testet och restriktionsendonukleaslokalisering
(tabell 14.2.2). Positiva resultat uppnåddes med båda metoder
i alla fall, vilket gav ett värde på 100% för korrelation, sensitivitet
och specificitet.
Tabell 14.2.2
Jämförelse av typning av HSV 1 och HSV 2
med IMAGEN HSV och restriktionsendonukleaslokalisering
(REM)
TEST
REM
IMAGEN HSV
Antal prov
RESULTAT
HSV 1 HSV 2 HSV 1
HSV 1 HSV 2 HSV 2
23
20
0
(53,5) (46,5) (0)
( ) Uttryckt som procent av alla analyserade prov.
HSV 2
HSV 1
0
(0)
14.3. KORSREAKTIVITET
IMAGEN HSV-typningstest utfördes mot andra virus som lämpade
sig för isolering i cellkultur från humanprov. Alla organismer som
testades (tabell 14.3) var negativa med både IMAGEN HSV 1- och
IMAGEN HSV 2-reagens.
Tabell 14.3
Virus som testats med IMAGEN HSV-test och
befanns vara icke-reaktiva
Adenovirus 2,3,4
Cytomegalovirus
Echo-virus 11
Epstein Barr-virus
Herpes zoster
Parainfluensa 1
Respiratorisk syncytialvirus
15. REFERENSER
1.
Francki R.I.B., Fauquet C.M., Knudson D.L. and Brown F
Classification and nomenclature of viruses. Fifth Report of the
International Committee on Taxonomy of Viruses. Archives of Virology,
Supplement 2, Spurger Velacy, New York, pp 103-106.
Adams E. (1982)
2.
3.
Herpes Simplex Virus infections. In Herpes virus infections: clinical
aspects (ed. Glaser, R.) Marcel Dekker Inc., New York, pp 1-55.
Longson M. (1990)
4.
Herpes simplex. In principles and practice of clinical virology (eds. A.J.
Zuckerman et al) John Wiley and Sons Ltd, pp 3-42.
Corey L. and Spear P.G. (1986)
5.
Infections with Herpes Simplex Virus Part 2.
New England Journal of Medicine 314: No 12: 749 757.
Peterslund N.A. (1991)
6.
Herpes virus infection: An overview of the clinical manifestations.
Scand. J. Infect. Suppl. 78: 15 20.
Balfour H.H. (1987)
7.
Acyclovir. In antimicrobial agents annual 2 (eds. Peterson, P.K. and
Verhoef. J.)
Elsevier Science Publishers, pp 315-329.
Corey L. (1986)
8.
Laboratory diagnosis of Herpes Simplex Virus infections.
Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 4: 1115 1195.
Gleaves C.A., Wilson D.J., Wold A.D. and Smith T.E. (1985)
Detection and serotyping of Herpes Simplex virus in MRC-5 cells using
centrifugation and monoclonal antibodies 16 hours post inoculation.
J. Clin. Microbiol. 21: pp 29.
IFU X7851 reviderad oktober 2012
OXOID Limited, Wade Road, Basingstoke,
Hampshire, RG24 8PW, Storbritannien
TEKNISK RÅDGIVNING OCH KUNDTJÄNST
Ställ alla frågor till Oxoid lokala dotterbolag eller distributör.
